Lippia alba (Mill.) N.E. Br. ex Britton & P. Wilson

Lípia, erva-cidreira-de-arbusto, falsa-melissa e chá-de-tabuleiro.

Família 
Informações gerais 

Originária da América do Sul, ocorrendo principalmente na Venezuela, Equador, Peru, Bolívia, Brasil e Argentina. Também pode ser encontrada no sul dos Estados Unidos, México e nas Antilhas. Cultivada para fins medicinais, cosmecêuticos, ornamentais e culinários. Suas principais indicações são: sedativa, antiespasmódica, antidispéptica, antitérmica, antiviral, antibacteriana, antiparasitária, antisséptica, hipotensora, cardiotônica, expectorante, anti-inflamatória, analgésica, antinociceptiva, anticonvulsivante e cicatrizante[1,2,3,4,5,6,7,8,9,10].

Referências informações gerais
1 - FERRO, D. & PEREIRA, A. M. S. Fitoterapia: Conhecimentos tradicionais e científicos, vol. 2. 1 ed. São Paulo: Bertolucci, 2018, p. 157-167.
2 - PEREIRA, A. M. S. et al. Formulário Fitoterápico da Farmácia da Natureza. 2 ed. São Paulo: Bertolucci, 2014, p.  158-164.
3 - PEREIRA, A. M. S. et al. (Org.). Manual Prático de Multiplicação e Colheita de Plantas Medicinais. Ribeirão Preto: Bertolucci, 2011, p. 131-134.
4 - LORENZI, H. & MATOS, F. J. de A. Plantas medicinais no Brasil: Nativas e exóticas. 2 ed. São Paulo: Instituto Plantarum de Estudos da Flora Ltda, 2008, p. 525-526.
5 - GUPTA, M. P. (Ed.). 270 Plantas medicinales ibero-americanas. Bogotá: Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología, Cyted, Convenio Andres Bello, 1995. p. 557-559.
6 - VIEIRA, R. F. (Ed.). Lippia alba. In: VIEIRA, R. F. V. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o Futuro: Região Centro-Oeste. Brasília, DF: MMA, 2016. p. 383-39.
7 - HENNEBELLE, T. et al. Ethnopharmacology of Lippia alba. J Ethnopharmacol, v. 116, n. 2, p.211-222. doi: 10.1016/j.jep.2007.11.044
8 - PEREIRA, A. M. S. (Org.). Formulário de Preparação Extemporânea: Farmácia da Natureza – Chás Medicinais. 1 ed. São Paulo: Bertolucci, 2017, p. 107-113.
9 - GILBERT, B. et al. Monografia de plantas medicinais brasileiras e aclimatadas. Curitiba: Abifito, 2005, p. 67-72.
10 - SILVA, T. D. et al. Lippia alba (erva-cidreira). In: CORADIN, L. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o futuro: Região Nordeste. Brasília, DF: MMA, 2018. p. 363-369.
Descrição da espécie 

Arbusto ou subarbusto, perene, de morfologia variável, com até 2 m de altura, ramos ou caules finos, quadrangulares, esbranquiçados, quebradiços, podendo apresentar porte decumbente, ereto ou intermediário; folhas opostas, inteiras, elípticas, ápice agudo, estreitas na base, de bordos serreados, curto-pecioladas, membranáceas, pubescentes, com até 6 cm de comprimento, muito aromática; flores hermafroditas, reunidas em inflorescências axilares capituliformes, de eixo curto e tamanho variável, com brácteas ovais, cálice labiado e corola hipocrateriforme, rosa, lilás ou alva, e amarelo no interior do tubo; fruto esquizocarpo, subgloboso ou oboval, de coloração rósea-arroxeada, com cerca de 3 mm de diâmetro, mericarpos com superfície dorsal lisa, contendo 1 semente de cor marrom[1,2,3,4,5,6,7,8,9].

Referências descrição da espécie
1 - FERRO, D. & PEREIRA, A. M. S. Fitoterapia: Conhecimentos tradicionais e científicos, vol. 2. 1 ed. São Paulo: Bertolucci, 2018, p. 158.
2 - HENNEBELLE, T. et al. Ethnopharmacology of Lippia alba. J Ethnopharmacol, v. 116, n. 2, p.211-222. doi: 10.1016/j.jep.2007.11.044
3 - MATOS, F. J. A. Plantas medicinais: Guia de seleção e emprego de plantas medicinais usadas em fitoterapia no Nordeste do Brasil. 2 ed. Fortaleza: Imprensa Universitária – UFC, 2000, p. 214-215.
4 - GUPTA, M. P. (Ed.). 270 Plantas medicinales ibero-americanas. Bogotá: Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología, Cyted, Convenio Andres Bello, 1995. p. 558.
5 - LORENZI, H. & MATOS, F. J. de A. Plantas medicinais no Brasil: Nativas e exóticas. 2 ed. São Paulo: Instituto Plantarum de Estudos da Flora Ltda, 2008, p. 525.
6 - PEREIRA, A. M. S. et al. (Org.). Manual Prático de Multiplicação e Colheita de Plantas Medicinais. Ribeirão Preto: Bertolucci, 2011, p.131-132.
7 - VIEIRA, R. F. (Ed.). Lippia alba. In: VIEIRA, R. F. V. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o Futuro: Região Centro-Oeste. Brasília, DF: MMA, 2016. p. 383.
8 - GILBERT, B. et al. Monografia de plantas medicinais brasileiras e aclimatadas. Curitiba: Abifito, 2005, p. 62-63.
9 - SILVA, T. D. et al. Lippia alba (erva-cidreira). In: CORADIN, L. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o futuro: Região Nordeste. Brasília, DF: MMA, 2018. p. 363.
Nome popular Local Parte da planta Indicação Modo de preparo Forma de uso Restrição de uso Referências
Erva-cidreira Oriximiná (Pará, Brasil) Folha

Sedativa, digestiva, estomacal, antiflatulenta, antiespasmódica, anti-hipertensiva, antigripal e expectorante.

Infusão ou decocção.

-

-

[ 1 ]
Erva-cidreira Comunidade Salamina/Putumuju (Maragogipe, Bahia) -

Calmante, antitussígena, digestiva, antiespasmódica, hipocolesterolemiante, anti-hipertensiva e antitérmica.

-

-

-

[ 2 ]
Salvia sija Guatemala Folha e flor

Expectorante, antitussígena, antitérmica, no tratamento de bronquite, dor de gargante ou no peito.

-

-

-

[ 3 ]
- Vale do Ribeira (São Paulo, Brasil) Raiz e folha

Anti-hipertensiva, sedativa, no tratamento de problemas digestivos em geral, náuseas, vômitos, bronquite.

Infusão e xarope.

-

-

[ 4 ]
- Vale do Ribeira (São Paulo, Brasil) Folha

No tratamento de feridas.

-

Uso local.

-

[ 4 ]
- Igarassu (Pernambuco, Brasil) Folha

No tratamento de problemas digestivos em geral e anemia.

Infusão.

-

-

[ 4 ]
- San Jose de Pare-Boyacá (Colômbia) -

No tratamento de problemas digestivos em geral, antidiarreica, antigripal, antitussígena e analgésica.

-

-

-

[ 4 ]
- Itacaré (Bahia, Brasil) -

No tratamento de problemas digestivos em geral.

-

-

-

[ 4 ]
- Livingston (Guatemala) Folha

Antitussígena, no tratamento de náusea, vômito e flatulência.

Infusão, decocção e inalação.

-

-

[ 4 ]
- Livingston (Guatemala) Folha

No tratamento da dor de cabeça.

Cataplasma.

-

-

[ 4 ]
- Livingston (Guatemala) Folha

No tratamento de doenças de pele.

Maceração.

Lavar o local.

-

[ 4 ]
- Oaxaca e Istmo Tehuantepec (México) Folha

No tratamento de dores estomacais.

-

-

-

[ 4 ]
- Sapucaia (Bahia, Brasil) -

Antiflatulenta, sedativa, anti-hipertensiva e analgésica.

-

-

-

[ 4 ]
- Quilombola de Olho D’água dos Pires (Esperantina, Piauí, Brasil) Folha

Antigripal e no tratamento de dor de garganta.

Infusão.

-

-

[ 4 ]
- Pontes/Lacerda e Comodo (Mato Grosso, Brasil) Folha

Sedativa.

Infusão ou xarope.

-

-

[ 4 ]
- Ponta Grossa (Porto Alegre, Brasil) Folha

Sedativa.

-

-

-

[ 4 ]
Cidreira Nordeste (Brasil) Folha e caule

Ansiolítica, calmante, antiespasmódica, antidiarreica, útil no tratamento de doenças digestivas, hepática e cardíaca.

Infusão e decocção. 

-

-

[ 5 ]
Erva-cidreira Comunidade Marron (Mata Atlântica, Brasil) -

Calmante, antiespasmódica, indigestão, anti-hipertensiva, hipocolesterolemiante e antitérmica.

-

-

-

[ 6 ]
Falsa-melissa, erva-cidreira, sálvia-da-gripe Brasil Folha

Sedativa, espasmolítica, expectorante, antisséptica e no tratamento de infecções respiratórias.

-

-

-

[ 7 ]
Erva-cidreira Ceará (Nordeste, Brasil) Folha

Calmante, ansiolítica, estomacal, tônica e antidiarreica.

Infusão.

Uso interno.

-

[ 8 ]
Oraganillo, poleo, mejorana, ponto alivio e licorice verbena Colômbia (Zona Tropical) Folha

Cardiotônica, expectorante, antiartrítica, antirreumática, hipocolesterolemiante, útil no tratamento de problemas digestivos e dor de cabeça.

Infusão.

-

-

[ 9 ]
Erva-cidreira, chá-de-tabuleiro, cidrila, cidreira-brava e falsa-melissa Nordeste (Brasil) Folha (quimiotipos: citral/mirceno e citral/limoneno)

Calmante, espasmolítica e analgésica.

Chá.

-

-

[ 10 , 11 ]
Alecrim-do-campo, alecrim-selvagem, cidreira-carmelitana, salva-do-Brasil e salva-brava Nordeste (Brasil) Folha (quimiotipo: carvona/limoneno)

Mucolítica.

Chá.

-

-

[ 12 ]
Erva-cidreira Botucatu-SP (Brasil) Parte aérea

Ansiolítica, calmante, antiespasmódica, antiflatulenta, digestiva e expectorante.

Infusão: 1 a 3 g (1 a 3 colheres de chá) do material vegetal em 150 mL (1 xícara de chá) de água.

Tomar 1 xícara de chá de 3 a 4 vezes ao dia.

Dose alta pode provocar irritação gástrica, bradicardia e hipotensão.

[ 14 ]
Mastranto e orozul Panamá Folha

Digestiva e antiespasmódica (hepática).

Infusão.

Tomar 1 xícara 3 vezes ao dia.

-

[ 13 ]
- - -

Antitussígena e no tratamento de resfriado.

Infusão.

-

-

[ 13 ]
Jaunilama Costa Rica Folha e inflorescência

Antiespasmódica (hepática), sudorífica, expectorante e emenagoga.

Infusão.

-

-

[ 13 ]
Jaunilama Costa Rica -

No tratamento de resfriado.

Extrato etanólico.

Uso externo na forma de fricções.

-

[ 13 ]
Pronto alivio. Quita dolor, menta americana, anis de Espanha e toronjil mentol Colômbia e Cuba -

Sedativa, hipoglicemiante, diaforética, emenagoga, antiespasmódica e digestiva.

-

-

-

[ 13 ]
Capim do negro, mirto, salvia betônica e sonora México Caule fresco.

No tratamento pós-parto.

-

-

-

[ 13 ]
- Venezuela Planta toda

Indutora do sono.

-

Associar com Plantago major e alface.

-

[ 13 ]
- Argentina -

Expectorante e anti-hemorroidária.

-

-

-

[ 13 ]
Salvia sija, juanilama, mastranto e salvia santa Guatemala Folha e flor

Antiespasmódica, antidiarreica, antidispéptica, carminativa, antiemética, antiasmática, anticatarral, antitussígena, sedativa, antiartrítica, analgésica (dor muscular e de dente), anti-hipertensiva, no tratamento de doenças venéreas, cutâneas e no pós-parto.

Decocção.

-

-

[ 13 ]
Salvia sija, juanilama, mastranto e salvia santa Guatemala Folha (triturada)

Indutora do sono.

-

Inalação.

-

[ 13 ]
Salvia sija, juanilama, mastranto e salvia santa Guatemala -

Descongestionante das vias respiratórias e no tratamento de resfriados.

Extrato etanólico.

Uso externo na forma de fricções.

-

[ 13 ]
Salvia sija, juanilama, mastranto e salvia santa. Guatemala -

Antisséptica, adstringente, emenagoga, espasmolítica, estomáquica, expectorante, febrífuga e sudorífera.

-

-

-

[ 13 ]

Referências bibliográficas

1 - OLIVEIRA, D. R. et al. Ethnopharmacological study of two Lippia species from Oriximiná, Brazil. J Ethnopharmacol, v. 108, n. 1, p.103-108, 2006. doi: 10.1016/j.jep.2006.04.018
2 - DE SANTANA, B. F. et al. Ethnomedicinal survey of a maroon community in Brazil's Atlantic tropical forest. J Ethnopharmacol, v. 181, p.37-49, 2016. doi: 10.1016/j.jep.2016.01.014
3 - CACERES, A. et al. Plants used in Guatemala for the treatment of respiratory diseases. 1. Screening of 68 plants against gram-positive bactéria. J Ethnopharmacol, v. 31, n. 2, p.193-208, 1991. doi: 10.1016/0378-8741(91)90005-x
4 - HENNEBELLE, T. et al. Ethnopharmacology of Lippia alba. J Ethnopharmacol, v. 116, n. 2, p.211-222. doi: 10.1016/j.jep.2007.11.044
5 - MAGALHÃES, K. N. et al. Medicinal plants of the Caatinga, northeastern Brazil: Ethnopharmacopeia (1980-1990) of the late professor Francisco José de Abreu Matos. J Ethnopharmacol, v. 237, p.314-353, 2019. doi: 10.1016/j.jep.2019.03.032
6 - DE SANTANA, B. F. et al. Ethnomedicinal survey of a maroon community in Brazil's Atlantic tropical forest. J Ethnopharmacol, v. 181, p.37-49, 2016. doi: 10.1016/j.jep.2016.01.014
7 - ANDRIGHETTI-FRÖHNER, C. R. et al. Antiviral evaluation of plants from Brazilian Atlantic Tropical Forest. Fitoterapia, v. 76, n. 3-4, p.374-378, 2005. doi: 10.1016/j.fitote.2005.03.010
8 - MATOS, F. J. A. O formulário fitoterápico do professor Dias da Rocha: Informações sobre o emprego na medicina caseira, de plantas do Nordeste, especialmente do Ceará. 2 ed. Fortaleza: EUFC, 1997, p. 124.
9 - WEDLER, E. Atlas de las plantas medicinales silvestres y cultivadas em la zona tropical. 2 ed. Colômbia: Todográficas Ltda, 2017, p. 304.
10 - MATOS, F. J. A. Plantas medicinais: Guia de seleção e emprego de plantas medicinais usadas em fitoterapia no Nordeste do Brasil. 2 ed. Fortaleza: Imprensa Universitária – UFC, 2000, p. 214-215.
11 - LORENZI, H. & MATOS, F. J. de A. Plantas medicinais no Brasil: Nativas e exóticas. 2 ed. São Paulo: Instituto Plantarum de Estudos da Flora Ltda, 2008, p. 525.
12 - LORENZI, H. & MATOS, F. J. de A. Plantas medicinais no Brasil: Nativas e exóticas. 2 ed. São Paulo: Instituto Plantarum de Estudos da Flora Ltda, 2008, p. 525.
13 - GUPTA, M. P. (Ed.). 270 Plantas medicinales ibero-americanas. Bogotá: Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología, Cyted, Convenio Andres Bello, 1995. p. 558.
14 - LIMA, G. P. P. Medicina verde: programa municipal de plantas medicinais e fitoterápicos de Botucatu (SP) – Saúde - Prescritores. 1 ed. Prefeitura Municipal de Botucatu: Universidade Estadual Paulista, 2015, p. 17.

Analgésica

Analgésica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Extrato hidroalcoólico (50:50 p/p). Rendimento: 4,2%. Dose para ensaio: 1 g/kg.

In vivo:

Em camundongos albino tratados com extratos vegetais, submetidos aos testes de contorção abdominal e movimento de cauda.

Neste estudo, das 17 espécies vegetais, Lippia alba, Piper abutiloides, P. cincinnatoris, P. lindbergii e Tillandsia usneoides apresentam atividade analgésica significativa.

[ 39 ]

Anestésica

Anestésica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial. Concentrações para ensaio: 3 à 1000 µg/mL.

In vitro:

Em nervos ciáticos de ratos Wistar (Rattus norvegicus), estimulados por frequência elétrica (0,2 Hz) e incubados com o óleo essencial, para determinar parâmetros eletrofisiológicos (reóbase, cronaxia e Vpp).

 

Observou-se que o óleo de L. alba deprime a excitabilidade do nervo ciático, demonstrando atividade anestésica, dependente da concentração.

[ 8 ]

Ansiolítica

Ansiolítica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha e flor

Óleo essencial (quimiotipo carvona): 1 kg do material vegetal, por destilação à vapor.

Doses para ensaio: 12,5 à 25 mg/kg.

In vivo:

Em ratos Wistar submetidos aos testes do labirinto em T elevado e campo aberto, pré-tratados com os óleos vegetais, com posterior análise de parâmetros comportamentais.

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade ansiolítica, além da ausência de alteração locomotora.

[ 21 ]

Anti-quorum sensing

Anti-quorum sensing
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial (quimiotipos: limoneno/carvona e geranial/neral): 500 g do material vegetal em 4 L de água, por hidrodestilação e hidrodestilação assistida em micro-ondas. Concentrações para ensaio:  0,025 à 1,25 µg/mL. Outras espécies em estudo: Ocotea sp., Swinglea glutinosa, Elettaria cardamomum, Zingiber officinale e Minthostachys mollis.

In vitro:

Em cultura de Escherichia coli (plasmídeo pJBA132) e Pseudomonas putida (plasmídeo pKRC12), incubadas com N-acil-homoserina lactona (AHL) e óleos essenciais, com posterior análise de atividade anti-quorum (QS).

 

Observou-se que L. alba e Ocotea sp. apresentam atividade anti-QS, principalmente para plasmídeo sensor pJBA123.

[ 7 ]
Planta toda e folha

Óleos essenciais: por destilação à vapor e hidrodestilação assistida por micro-ondas. Concentrações para ensaio: 0,01 à 300 µg/mL.

In vitro:

Em cultura de Chromobacterium violaceum (CV026), estimulada por N-acil-homoserina lactona (C6-HSL) e incubada com os óleos vegetais, com posterior análise dos níveis de violaceína (quorum sensing-QS).

Em cepas de Staphyloccus aureus, submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, com posterior análise do diâmetro da zona de inibição (mm).

 

Observou-se que L. alba (quimiotipo geranial: neral) inibe o mecanismo QS, demonstrando atividade antibacteriana.

[ 17 ]

Antibacteriana

Antibacteriana
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha e flor

Extrato: 50 g do material vegetal (pó) em 500 mL de etanol à 88%.

In vitro:

Em cultura de Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae e S. pyogenes, submetidas ao teste de disco-difusão, para determinar a zona de inibição (mm).

 

Neste estudo, foram analisadas 68 espécies vegetais, dentre as quais Physalis philadelphica e Lippia alba apresentam atividade antibacteriana mais potente.

[ 38 ]
Folha

Óleo essencial: 236 g do material vegetal (fresco), por hidrodestilação. Rendimento: 0,52%. Concentrações para ensaio: 3 à 50 µg/mL.

In vitro:

Em diferentes culturas de Staphylococcus aureus, incubadas com óleo essencial na presença de eritromicina, submetidas ao teste antibacteriano por contato gasoso e disco-difusão (com eritromicina) em ágar para determinar a zona de inibição (mm). 

 

O óleo essencial de L. alba apresenta ação antibacteriana, demonstrando sinergismo significativo quando associado ao antibiótico eritromicina.

[ 28 ]

Antibacteriana e Antibiofilme

Antibacteriana e Antibiofilme
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Parte aérea

Óleo essencial: extração de 1 kg do material vegetal (seco), por hidrodestilação. Concentrações para ensaio: 0,0625 à 4 mg/mL.

In vitro:

Em cepas de Staphylococcus aureus, submetida ao teste de microdiluição em ágar, para determinar concentração mínima (CIM), concentração bactericida mínima (CBM), formação de biofilme (cristal violeta).

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade antibacteriana e antibiofilme.

[ 5 ]

Antibacteriana e Antioxidante

Antibacteriana e Antioxidante
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Parte aérea

Extrato etanólico: a partir do material vegetal seco ou fresco. Frações: hexano, diclorometano, acetato de etila e hidroalcoólica. Concentrações para ensaio: 1 à 2000 µg/mL.

In vitro:

Determinar atividade antioxidante através do radical DPPH.

Em cepas de Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Streptococcus mutans e cepas multirresistentes, incubadas com o extrato vegetal e frações, para determinar concentração inibitória mínima (CIM).

 

Observou-se que o extrato etanólico a partir do material vegetal fresco de L. alba apresenta atividades antibacteriana e antioxidante mais potentes.

[ 11 ]

Antibiofilme

Antibiofilme
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências

Óleo essencial: por destilação à vapor. Rendimento: 0,5%. Concentrações para ensaio: 0,001 à 0,1 mg/100 mL. Outra espécie em estudo: Cymbopogon citratus.

In vitro:

Em biofilme de Streptococcus mutans, inoculado com os óleos essenciais, para determinar concentração mínima de erradicação do biofilme (MBEC).

Em células de ovário de hamster, incubadas com óleos essenciais, com posterior análise de viabilidade celular (MTT e ELISA).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba e C. citratus, apresentam atividade antibiofilme, com MBEC = 95,8% e 95,4% respectivamente, além da ausência de citotoxicidade.

[ 3 ]

Anticonvulsivante

Anticonvulsivante
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Óleo essencial (quimiotipos: citral, limoneno e mirceno). Doses para ensaio: 50 à 800 mg/kg.

In vivo:

Em camundongos Swiss portadores de convulsões induzidas por pentilenotetrazol (PTZ), pré-tratados com o óleo vegetal (i.p. ou oral), associado ou não com diazepam, com posterior análise do tempo de latência e ocorrência de convulsão e morte, e caracterização da convulsão severa.

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba apresentam atividade anticonvulsivante, além de sinergismo com diazepam.

[ 23 ]

Antiespasmódica

Antiespasmódica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial. Concentrações para ensaio: 1 à 3000 µg/mL.

In vitro:

Em segmentos da traqueia isolada de ratos Wistar (Rattus norvegicus), incubados com óleo essencial, ACh, KCl e BaCl2, com posterior análise da contratilidade muscular.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade antiespasmódica, através do bloqueio dos canais de cálcio.

[ 15 ]

Antifúngica

Antifúngica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Óleo essencial (rico em linalol): a partir do material vegetal (seco), por destilação à vapor. Concentrações para ensaio: 1 à 5 mg/mL.

In vitro:

Em cultura de dermatófitos de humanos, Trichophyton rubrum, Microsporum gypseum e Epidermophyton flocosum, submetidas ao teste de microdiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM), análise da atividade fungicida e fungistática, atividade inibitória das enzimas peptidase/queratinase na presença dos substratos albumina e queratina (SDS-PAGE).

 

O óleo essencial rico em linalol de L. alba inibe a atividade das enzimas peptidase e queratinase, demonstrando ação antifúngica.

[ 14 ]
Folha

Extrato: maceração de 216,73 g do material vegetal (fresco) em etanol à 95%. Rendimento: 5,83 g. Frações: hexano, diclorometano, acetato de etila, butanol e hidroalcoólica. Rendimento: 1,13, 0,15, 0,08, 0,26 e 0,35 g, respectivamente.

In vitro:

Em cultura de Candida albicans, C. glabrata, C. krusei, C. parapsilosis, C. tropicalis, Cryptococcus gatti e C. neoformans, incubadas com extrato e frações vegetais, submetidas ao teste de microdiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM).

Em cultura de C. glabrata incubadas com a fração butanólica associada com anfotericina B, itraconazol e fluconazol, para determinar a concentração inibitória fracionária (FIC) e o índice de concentração inibitória mínima (FICI).

 

O extrato e frações de L. alba apresentam atividade antifúngica, contudo a fração butanólica demonstra sinergismo significativo quando associada aos antifúngicos fluconazol e itraconazol.

[ 31 ]
Folha

Óleo essencial: 40 g do material vegetal (fresco), por hidrodestilação. Rendimento: 0,10% (p/p).

Extrato: maceração de 10 g do material vegetal (seco) em 100 mL etanol à 70%. Rendimento: 32,30%.

In vitro:

Em cultura de Candida albicans incubada com óleo ou extrato vegetal, com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM).

 

Neste estudo, das 35 espécies vegetais, os óleos essenciais de Aloysia triphylla, Anthemis nobilis, Cymbopogon martini, C. winterianus, Cyperus articulatus, C. rotundus, Lippia alba, Mentha arvensis, M. piperita, Menha spp., Mikania glomerata, Stachys byzantina e Solidago chilensis, apresentam atividade antifúngica, exceto os extratos etanólicos.

[ 32 ]

Antifúngica e Antitumoral

Antifúngica e Antitumoral
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Óleo essencial: 150 g do material vegetal (fresco), por destilação a vapor. Rendimento: 0,21%. Concentrações para ensaio: 0 à 100 µg/mL.

In vitro:

Em células de melanoma murino (B16F10Nex2), de adenocarcinoma de pulmão humano (A549), de câncer mama humano (MCF-7) e endoteliais da veia umbilical de humano (HUVEC), incubadas com óleo essencial, com posterior análise de viabilidade celular (ensaio MTT).

Em cepa de Candida tropicalis, C. dubliniensis, C. glabata, C. parapsilosis, C. krusei, C. albicans, Cryptococcus gatti, C. neoformans, Saccharomyces cerevisiae, Eschericia coli, Serratia marcescens, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus epidermidis e Enterococcu faecalis, submetidas ao teste disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM).

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade antifúngica e antitumoral (B16F10Nex2 e A549), além da ausência de citotoxicidade.

[ 6 ]

Antifúngica e Citotóxica

Antifúngica e Citotóxica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha e caule

Óleos essenciais (quimiotipos: carvona e citral): 300 g do material vegetal (seco), por hidrodestilação assistida por micro-ondas. Concentrações para ensaio: 31,25 à 500 µg/mL.

In vitro:

Em cultura de células Vero e HeLa, incubadas com óleo essencial, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em cepas de Candida parapsilosis, C. krusei, Aspergillus flavus e A. fumigatus, incubadas com óleo essencial, submetidas aos testes de microdiluição e macrodiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM).

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba, quimiotipo citral, apresenta atividade citotóxica e antifúngica (A. fumigatus e C. krusei) mais potente.

[ 18 ]

Antigenotóxica

Antigenotóxica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial: hidrodestilação assistida por micro-ondas. Concentrações para ensaio: 0,4 à 0,8%. Outras espécies em estudo: Lippia citriodora, L. dulcis, L. graveolens, L. micromera e L. origanoides.

In vitro:

Em cepas de E. coli submetidas a radiação ultravioleta (UV, 1,4 e 27,0 J/m2) e incubadas com óleo essencial, com posterior análise da genotoxicidade (ensaio SOS Chromotest).

Determinar atividade antioxidante através da Capacidade de Absorção do Radical de Oxigênio (ORAC).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. graveolens (quimiotipo timol), L. origanoides (quimiotipos carvacrol e timol), L. alba (quimiotipo citral e mircenona), L. citriodora (quimiotipo citral) e L. micromera (qumiotipo timol) apresentam atividade antigenotóxica mais potentes, sendo promissoras para fotoproteção e prevenção do câncer de pele.

[ 27 ]

Antimicrobiana

Antimicrobiana
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Óleo essencial: por hidrodestilação. Rendimento: 0,25% Outra espécie em estudo: Lippia alba f. intermedia.

In vitro:

Em culturas de Candida albicans, C. parapsilosis, C. guilliermondii, Cryptococcus neoformans, Trichophyton rubrum, Lactobacillus casei, Staphylococcus aureus e Streptococcus mutans, incubadas com os óleos essenciais e submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar a zona de inibição (cm).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba e L. alba f. intermedia apresentam atividade antimicrobiana.

[ 24 ]

Antimicrobiana e Citotóxica

Antimicrobiana e Citotóxica
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha e flor

Óleo essencial: extração do material vegetal (seco), por destilação à vapor. Concentrações para ensaio: 5 à 500 µg/mL.

In vitro:

Em patógenos periodontais, Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Fusobacterium nucleaatum, Porphyromonas gingivalis e Bacteroides fragilis, submetidos ao teste de macrodiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM) e concentração bactericida mínima (CBM).

Em osteoclastos maduros (OCs) de humanos, incubados com o óleo vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (ensaio MTT), apoptose (ensaio TUNEL) e expressão do receptor Fas e metaloproteinase-9 (Imuno-histoquímica).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba apresentam atividade antimicrobiana e citotóxica, sendo promissora para o tratamento da periodontite.

[ 12 ]
Folha e flor

Extrato: 400 g do material vegetal (pó)) em etanol. Frações:  n-hexano, clorofórmio e acetato de etila. Concentração para ensaio: 500 (μg/disco) e 2,5 à 100 µg/mL.

In vitro:

Em cepas de Bacilus subtilis, B. megaterium, Staphylococcus aureus, Sarcina lutea, Escherichia coli, Shigella dysenteriae, Salmonella typhi, S. paratyphy, Vibrio mimicus, V. parahemolyticus, Saccharromyces cerevaceaeAspergillus flavus, A. niger e Candida albicans, submetidas ao teste de disco-difusão em água, com posterior análise do diâmetro da zona de inibição (mm).

Determinar a letalidade média (DL50) dos extratos e frações vegetais em Artemia spp.

 

Observou-se que L. alba apresenta atividade antimicrobiana (fração de clorofórmio) e citotóxica (fração de n-hexano e extrato etanólico).

[ 16 ]

Antioxidante

Antioxidante
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Parte aérea

Extrato: 1 kg do material vegetal (seco) em solução hidroalcoólica. Rendimento: 1 L.

In vitro:

Determinar atividade antioxidante através do radical DPPH, peroxidação lipídica e radical hidroxila (OH).

Em cultura de Escherichia coli (IC 188) e linhagem isogênica (IC 203), incubadas com os extratos vegetais, associados ou não com tert-butil-hidroperóxido (TBH), com posterior análise da mutagenicidade.

 

Neste estudo, foram analisadas 45 espécies de plantas, dentre as quais Lippia alba, Curcuma longa, Tamarindus indica, Pimenta dioica, Rheedia aristata apresentam ação antioxidante, contudo apenas P. dioica apresenta potencial antimutagênico.

[ 37 ]
Folha e caule

Óleo essencial: 100 g do material vegetal (fresco), por hidrodestilação. Concentrações para ensaio: 1,0 à 20 g/L.

In vitro:

Determinar de atividade antioxidante, através da oxidação do ácido linoleico, com posterior análise da peroxidação lipídica.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade antioxidante equivalente à vitamina E.

[ 22 ]

Antiprotozoária

Antiprotozoária
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Flor, Folha, Caule, Raiz

Óleo essencial (quimiotipos citral e carvone): 100 g do material vegetal (fresco e seco) em 0,5 L água (hidrodestilação assistida por micro-ondas). Concentrações para ensaio: 3,7 à 300 µg/mL.

In vitro:

Em cultura de células Vero, incubadas com os óleos vegetais, com posterior análise de citotoxicidade (CC50); e infectadas com Trypanosoma cruzi (forma tripomastigota), incubadas com os óleos essenciais, com posterior análise da morte parasitária (corante de Giemsa).

Em cultura celular de T. cruzi (formas epimastigota e tripomastigota), incubadas com óleos essenciais (Azul de tripan), para determinar a concentração inibitória media (CI50).

 

Neste estudo, o quimiotipo citral apresenta atividade antiprotozoária mais potente, contudo exibe alta citotoxicidade.

[ 4 ]
Parte aérea

Óleo essencial: hidrodestilação assistida por micro-ondas. Rendimentos: 0,3 à 1%. Concentrações para ensaio: 0 à 100 µg/mL. Outras espécies em estudo: Lippia citriodora, L. micromera, L. origanoides e L. dulcis.

In vitro:

Em cultura de Trypanosoma cruzi (epimastigota) e Leishmania chagasi (promastigota), incubadas com com óleos essenciais, com posterior contagem parasitária em hemocitômetro.

Em células Vero (linhagem de macacos) infectadas com T. cruzi (tripomastigota) e células THP-1 (leucêmica de humanos) infectadas com L. chagasi (promastigota), incubadas com óleos essenciais, com posterior análise do nível de infecção celular (coloração de Giemsa).

Em células Vero e THP-1 incubadas com óleos essenciais, com posterior análise de citotoxicidade (ensaio MTT).

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba e L. origanoides apresentam atividade antiprotozoária contra de T. cruzi e L. chagasi, respectivamente, além da ausência de citotoxicidade.

[ 25 ]

Antiviral

Antiviral
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial: por hidrodestilação assistida por micro-ondas. Concentrações para ensaio: 0,02 à 900 µg/mL. Outra espécie em estudo: Lipia citriadora.

In vitro:

Em células Vero incubadas com os óleos vegetais, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em células Vero infectadas com vírus da dengue (DENV-1, DENV-2, DENV-3 e DENV-4), incubadas com óleos essenciais (antes e após a adsorção viral), com posterior análise da reprodução viral através da concentração inibitória media (CI50).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba e L. citriodora apresentam atividade antiviral (antes da adsorção viral), contudo L. alba demonstra menor citotoxicidade.

[ 33 ]
-

Óleo essencial: material vegetal (seco), por hidrodestilação assistida por micro-ondas. Rendimento: 0,4% (p/p). Concentrações para ensaio: 3,7 à 100 µg/mL. Outras espécies em estudo: Lippia origanoides, Oreganum vulgare e Artemisia vulgaris.

In vitro:

Em células Vero incubadas com os óleos vegetais, com posterior análise da citotoxicidade (MTT).

Em células Vero infectadas por vírus da febre amarela (YFV), incubadas com os óleos vegetais (antes e após a adsorção viral), para determinar concentração inibitória mínima (CIM) e a reprodução viral.

 

Observou-se que os óleos essenciais das plantas analisadas, apresentam atividade antiviral, além da ausência de citotoxicidade.

[ 34 ]
Parte aérea

Extrato: maceração de 840 g do material vegetal (seco) em etanol/água (80:20). Frações: hidroalcoólica, diclorometano, acetato de etila e n-butanol. Rendimento: 10%, 0,3%, 0,3% e 1,3%, respectivamente. Outras espécies em estudo: Araucaria augustifolia, Bromelia antiacantha, Cuphea carthagenensis, Tillandsia usneoides e Wilbrandia ebractaeata.

In vitro:

Em células Vero infectadas por vírus da Herpes Simples 1 (HSV-1) e poliovírus (PV-2), incubadas com extratos e frações vegetais, com posterior análise da concentração citotóxica média (CC50), concentração efetiva média (CE50) e índice de seletividade (CC50/CE50).

 

Observou-se que as frações de n-butanol e acetato de etila de L. alba apresentam atividade antiviral mais potente.

[ 35 ]
Folha e caule

Extrato: 10 g do material vegetal (pó) em 100 mL de metanol ou água (infusão). Concentrações para ensaio: em diferentes concentrações.

In vitro:

Em cultura de células Vero, rim bovino (MDBK) e rim canino (MDCK), infectadas por vírus da Herpes Simples (HSV-1 e 2), vírus da diarreia bovina (BVDV-1) e influenza A (Inf A), respectivamente, incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise da concentração efetiva média (CE50) e concentração citotóxica média (CC50).

Em cultura de células mononucleares de sangue periférico de humanos (PBMC), infectadas com vírus da imunodeficiência tipo 1 (HIV-1), incubadas com extratos vegetais, com posterior análise da expressão do antígeno p24 (ELISA).

 

Neste estudo, das 15 espécies vegetais, observou-se que Coronopus didymus, Juglans australis e Lippia alba apresentam atividade antiviral contra BVDV-1, HSV e Inf A, respectivamente.

[ 36 ]

Gastroprotetora

Gastroprotetora
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Extrato: infusão de 10 g do material vegetal (seco) em 100 mL de água. Dose para ensaio: 12,5 g/kg.

In vivo:

Em ratos Wistar portadores de lesões gástricas induzidas por indometacina, pré-tratados com extrato vegetal (agudo e subagudo), com posterior análise da secreção gástrica (volume e pH), macroscópica e homogenato (grupo sulfidrila e proteínas) do estômago.

Observou-se que o uso agudo e subagudo de L. alba apresenta eficácia na prevenção de ulceras gástricas induzidas por acetaminofeno.

[ 29 ]

Hipolipemiante

Hipolipemiante
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Óleo essencial (quimiotipos: carvona, piperitona, tagetenona e citral). Concentrações para ensaio: 3,2 à 32 µg/mL.

In vitro:

Em células de hepatoma (HepG2) e de adenocarcinoma pulmonar (A549) de humanos, incubadas com os óleos essenciais, com posterior análise da concentração de lipídeos totais (saponificáveis e não saponificáveis); em células marcadas por acetato(14C) com posterior quantificação de colesterol e outros metabólitos da Via do Mevalonato, expressão de 3-hidroxi-3-metilglutaril-CoA redutase (HMGCR) e permeabilidade celular (coloração de DAPI).

 

Observou-se que L. alba apresenta atividade hipolipemiante, pois inibe diferentes vias lipogênicas.

[ 10 ]

Miorrelaxante e Sedativa

Miorrelaxante e Sedativa
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Parte aérea

Extrato: percolação de 50 g do material vegetal (pó) em etanol à 40, 60 e 80%. Rendimento: 37,98, 27,36 e 17,32 g, respectivamente. Dose para ensaio: 200 mg/kg.

In vivo:

Em camundongos Swiss submetidos a administração do extrato vegetal, e posteriormente aos testes de sono e convulsão induzidos por pentobarbital e pentilenotetrazol, respectivamente, Rota-Rod e temperatura corporal.

Em camundongos Swiss tratados com formulações spray-dried (dióxido de silício coloidal e dióxido de silício coloidal/β-ciclodextrina) a partir do extrato etanólico à 80%, e submetidos ao teste do sono induzido por pentobarbital.

Observou-se que o extrato etanólico à 80% apresenta atividade sedativa e miorrelaxante significativa, bem como a formulação spray-dried contendo como excipiente apenas o dióxido de silício coloidal.

[ 40 ]
Parte aérea

Extrato: percolação de 50 g do material vegetal (pó) em etanol à 40, 60 e 80 % (v/v). Dose para ensaio: 200 mg/kg.

In vivo:

Em camundongos Swiss tratados com os extratos vegetais, submetidos a convulsão e sono induzidos por pentilenotetrazol e pentobarbital, respectivamente, ao ensaio Rota-Rod e análise da temperatura corporal.

Observou-se que o extrato etanólico à 80% de L. alba apresenta ação sedativa e miorrelaxante mais potente.

[ 20 ]
Folha

Óleos essenciais (quimiotipos: citral/β-mirceno/limoneno, citral/limoneno e carvona/limoneno): 1 kg do material vegetal por hidrodestilação a vapor. Concentrações para ensaio: 10 à 200 mg/kg.

In vivo:

Em camundongos Swiss submetidos a administração do óleo vegetal, com posterior análise dos testes do Labirinto em cruz elevado, Campo aberto, Rota-rod e temperatura retal.

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba apresentam atividade sedativa, miorrelaxante e hipotérmica, contudo sem alteração locomotora.

[ 30 ]

Quimiopreventiva

Quimiopreventiva
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha e flor

Óleos essenciais (quimiotipos: citral e carvona/limoneno): 300 g do material vegetal (fresco), por hidrodestilação assistida por micro-ondas. Concentrações para ensaio: 0,9 à 450 mg/mL

In vitro:

Em cepas de Escherichia coli, incubadas com extrato vegetal e bleomicina, com posterior análise da genotoxicidade (Cromoteste SOS) e antigenotoxicidade (danos no DNA), através do Fator de Indução (FI).

 

Observou-se que os óleos essenciais de L. alba apresentam atividade quimiopreventiva, além da ausência de genotoxicidade

[ 9 ]

Redutora da frequência cardíaca

Redutora da frequência cardíaca
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
Folha

Extrato: 5 g do material vegetal (pó) em 65 mL de água. Concentrações para ensaio: 0,077 à 77 mg/mL. Outras espécies em estudo: Melissa officinalis e Cymbopogon citratus.

In vitro:

Em corações isolados de ratos (Rattus norvegicus albinus), submetidos a perfusão pelo método de Langendorff, com posterior análise da força de contração e frequência cardíaca.

 

Observou-se que os extratos das espécies em estudo reduziram a frequência cardíaca, contudo não houve alteração na força cardíaca.

[ 13 ]

Relaxante muscular

Relaxante muscular
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial. Concentrações para ensaio: 1 à 600 µg/mL.

In vitro:

Em miométrio de ratas Wistar (Rattus norvegicus), incubado com óleo essencial, KCl, BaCl2, ACh, oxitocina e serotonina, com posterior análise da contração muscular.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade relaxante da musculatura lisa, dependente da concentração, por inibição dos canais de cálcio.

[ 1 ]
Folha, Caule e flor

Óleos essenciais (quimiotipos: citral e linalol): a partir do material vegetal (seco), por destilação à vapor. Rendimento: 0,67 à 1,15%, respectivamente. Concentrações para ensaio: 0,3 à 300 µL/mL.

In vitro:

Em duodeno e íleo isolados de ratos Sprague-Dawley, incubados com óleos essenciais, acetilcolina, verapramil e L-NAME, com posterior análise da contratilidade muscular, níveis de óxido nítrico e cálcio.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba, quimiotipo citral, apresenta atividade relaxante da musculatura lisa, mais potente.

[ 19 ]
Folha

Óleo essencial: material vegetal (seco) por hidrodestilação. Concentrações para ensaio: 1 à 1000 µg/mL.

In vitro:

Em anéis da aorta de ratos Wistar, com ou sem endotélio, incubados com acetilcolina, L-fenilefrina, tetraetilamônio, nifedipina, cloreto de cálcio e cloreto de potássio, com posterior análise de contratilidade.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta efeito relaxante, através do bloqueio dos canais cálcio.

[ 26 ]

Vasorelaxante

Vasorelaxante
Parte da planta
Extrato / RDD / Padronização
Modelo de ensaio in vitro / in vivo Conclusão Referências
-

Óleo essencial. Concentrações para ensaio: 1 à 1000 µg/mL.

In vitro:

Em anéis aórticos de ratos Wistar (Rattus norvegicus), com endotélio preservado ou não, incubados com o óleo vegetal, KCl, ACh, BaCl2, L-NAME, BAY-K 8644, forbol 12,13-dibutirato, fenilefrina, nifedipina, indometacina e iberiotoxina com posterior análise da contratilidade muscular.

 

Observou-se que o óleo essencial de L. alba apresenta atividade vasorelaxante, dependente dos mediadores endoteliais (óxido nítrico e cicloxigenase).

[ 2 ]

Referências bibliográficas

1 - DE MORAIS, L. P. et al. Tocolytic activity of the Lippia alba essential oil and its major constituents, citral and limonene, on the isolated uterus of rats. Chem Biol Interact, v. 297, p.155-159, 2019. doi: 10.1016/j.cbi.2018.11.006
2 - DA SILVA, R. E. R. Vasorelaxant effect of the Lippia alba essential oil and its major constituent, citral, on the contractility of isolated rat aorta. Biomed Pharmacother, v. 108, p.792-798, 2018. doi: 10.1016/j.biopha.2018.09.073
3 - TOFIÑO-RIVERA, A. et al. Effect of Lippia alba and Cymbopogon citratus essential oils on biofilms of Streptococcus mutans and cytotoxicity in CHO cells. J Ethnopharmacol, v. 194, p.749-754, 2016. doi: 10.1016/j.jep.2016.10.044
4 - MORENO, E. M. et al. Induction of programmed cell death in Trypanosoma cruzi by Lippia alba essential oils and their major and synergistic terpenes (citral, limonene and caryophyllene oxide). BMC Complement Altern Med, v. 18, n. 1, p.1-16, 2018. doi: 10.1186/s12906-018-2293-7
5 - PORFÍRIO, E. M. et al. In vitro antibacterial and antibiofilm activity of Lippia alba essential oil, citral, and carvone against Staphylococcus aureus. Scientific World J, p.1-7, 2017. doi: 10.1155/2017/4962707
6 - DOS SANTOS, N. O. et al. Cytotoxic and antimicrobial constituents from the essential oil of Lippia alba (Verbenaceae). Medicines (Basel), v. 3, n. 3, p.19, 2016. doi: 10.3390/medicines3030022
7 - JARAMILLO-COLORADO, B. et al. Anti-quorum sensing activity of essential oils from Colombian plants. Prod Res, v. 26, n. 12, p.1075-1086, 2012. doi: 10.1080/14786419.2011.557376
8 - SOUSA, D. G. et al. Essential oil of Lippia alba and its main constituent citral block the excitability of rat sciatic nerves. Braz J Med Biol Res, v. 48, n. 8, p.697-702, 2015. doi: 10.1590/1414-431X20154710
9 - LÓPEZ, M. A. et al. Chemical composition and antigenotoxic properties of Lippia alba essential oils. Genet Mol Biol, v. 34, n. 3, p.479-488, 2011. doi: 10.1590/S1415-47572011005000030
10 - MONTERO-VILLEGAS, S. et al. Inhibition of mevalonate pathway and synthesis of the storage lipids in human liver-derived and non-liver cell lines by Lippia alba essential oils. Lipids, v. 52, n. 1, p.37-49, 2017. doi: 10.1007/s11745-016-4218-x
11 - DE OLIVEIRA, G. T. et al. Phytochemical characterisation and bioprospection for antibacterial and antioxidant activities of Lippia alba Brown ex Britton & Wilson (Verbenaceae). Nat Prod Res, v. 32, n. 6, p.723-731, 2018. doi: 10.1080/14786419.2017.1335727
12 - JUIZ, P. H. L. et al. Essential oils and isolated compounds from Lippia alba leaves and flowers: antimicrobial activity and osteoclast apoptosis. Int J Mol Med, v. 35, n. 1, p.211-217, 2015. doi: 10.3892/ijmm.2014.1995
13 - GAZOLA, R. et al. Lippia alba, Melissa officinalis and Cymbopogon citratus: effects of the aqueous extracts on the isolated hearts of rats. Pharmacol Res, v. 50, n. 5, p.477-480, 2004. doi: 10.1016/j.phrs.2004.01.012
14 - COSTA, D. C. M. et al. Inhibitory effect of linalool-rich essential oil from Lippia alba on the peptidase and keratinase activities of dermatophytes. J Enzyme Inhib Med Chem, v. 29, n. 1, p.12-17, 2014. doi: 10.3109/14756366.2012.743537
15 - CARVALHO, P. M. M. et al. Effect of the Lippia alba (Mill.) N.E. Brown essential oil and its main constituents, citral and limonene, on the tracheal smooth muscle of rats. Biotechnol Rep (Amst), v. 17, p.31-34, 2017. doi: 10.1016/j.btre.2017.12.002
16 - ARA, N. et al. In vitro antimicrobial and cytotoxic activities of leaves and flowers extracts from Lippia alba. Pak J Biol Sci, v. 12, n. 1, p.87-90, 2009. doi: 10.3923/pjbs.2009.87.90
17 - OLIVERO-VERBEL, J. et al. Composition, anti-quorum sensing and antimicrobial activity of essential oils from Lippia alba. Braz J Microbiol, v. 45, n. 3, p.759-767, 2014. doi: 10.1590/s1517-83822014000300001
18 - MESA-ARANGO, A. C. et al. Citral and carvone chemotypes from the essential oils of Colombian Lippia alba (Mill.) N.E. Brown: composition, cytotoxicity and antifungal activity. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 104, n. 6, p.878-884, 2009. doi: 10.1590/s0074-02762009000600010
19 - BLANCO, M. A. et al. Antispasmodic effects and composition of the essential oils from two South American chemotypes of Lippia alba. J Ethnopharmacol, v. 149, n. 3, p.803-809, 2013. doi: 10.1016/j.jep.2013.08.007
20 - ZÉTOLA, M. et al. CNS activities of liquid and spray-dried extracts from Lippia alba Verbenaceae (Brazilian false melissa). J Ethnopharmacol, v. 82, n. 2-3, p.207-215, 2002. doi: 10.1016/s0378-8741(02)00187-3
21 - HATANO, V. Y. et al. Anxiolytic effects of repeated treatment with an essential oil from Lippia alba and (R)-(-)-carvone in the elevated T-maze. Braz J Med Biol Res, v. 45, n. 3, p.238-243, 2012. doi: 10.1590/s0100-879x2012007500021
22 - STASHENKO, E. E. et al. Comparison of different extraction methods for the analysis of volatile secondary metabolites of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown, grown in Colombia, and evaluation of its in vitro antioxidant activity. J Chromatogr A, v. 1025, n. 1, p.93-103, 2004. doi: 10.1016/j.chroma.2003.10.058
23 - VIANA, G. S. et al. Anticonvulsant activity of essential oils and active principles from chemotypes of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown. Biol Pharm Bull, v. 23, n. 11, p.1314-1317, 2000 Nov;23(11):1314-7. doi: 10.1248/bpb.23.1314
24 - OLIVEIRA, D. R. et al. Ethnopharmacological study of two Lippia species from Oriximiná, Brazil. J Ethnopharmacol, v. 108, n. 1, p.103-108, 2006. doi: 10.1016/j.jep.2006.04.018
25 - ESCOBAR, P. et al. Chemical composition and antiprotozoal activities of Colombian Lippia spp. essential oils and their major componentes. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 105, n. 2, p.184-190, 2010. doi: 10.1590/s0074-02762010000200013
26 - MAYNARD, L. G. et al. Chemical composition and vasorelaxant effect induced by the essential oil of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown. (Verbenaceae) in rat mesenteric artery. Indian J Pharmacol, v. 43, n. 6, p.694-698, 2011. doi: 10.4103/0253-7613.89828
27 - RUIZ, N. Q. et al. Antigenotoxic effect against ultraviolet radiation-induced DNA damage of the essential oils from Lippia species. Photochem Photobio, v. 93, n. 4, p.1063-1072, 2017. doi: 10.1111/php.12735
28 - VERAS, H. N. H. et al. Enhancement of the antibiotic activity of erythromycin by volatile compounds of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown against Staphylococcus aureus. Pharmacogn Mag, v. 7, n. 28, p.334-337, 2011. doi: 10.4103/0973-1296.90415
29 - PASCUAL, M. E. et al. Antiulcerogenic activity of Lippia alba (Mill.) N. E. Brown (Verbenaceae). Farmaco, v. 56, n. 5-7, p.501-504, 2001. doi: 10.1016/s0014-827x(01)01086-2
30 - VALE, T. G. et al. Behavioral effects of essential oils from Lippia alba (Mill.) N.E. Brown chemotypes. J Ethnopharmacol, v. 67, n. 2, p.127-133, 1999. doi: 10.1016/s0378-8741(98)00215-3
31 - DE OLIVEIRA, G. T. et al. In vitro antifungal activities of leaf extracts of Lippia alba (Verbenaceae) against clinically important yeast species. Rev Soc Bras Med Trop, v. 47, n. 2, p.247-250, 2014. doi: 10.1590/0037-8682-0008-2013
32 - DUARTE, M. C. T. et al. Anti-candida activity of Brazilian medicinal plants. J Ethnopharmacol, v. 97, n. 2, p.305-311, 2005. doi: 10.1016/j.jep.2004.11.016
33 - OCAZIONEZ, R. E. et al. Virucidal activity of Colombian Lippia essential oils on dengue virus replication in vitro. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 105, n. 3, p.304-309, 2010. doi: 10.1590/s0074-02762010000300010
34 - MENESES, R. et al. Inhibitory effect of essential oils obtained from plants grown in Colombia on yellow fever virus replication in vitro. Ann Clin Microbiol Antimicrob, v. 8, p.2-6, 2009. doi: 10.1186/1476-0711-8-8
35 - ANDRIGHETTI-FRÖHNER, C. R. et al. Antiviral evaluation of plants from Brazilian Atlantic Tropical Forest. Fitoterapia, v. 76, n. 3-4, p.374-378, 2005. doi: 10.1016/j.fitote.2005.03.010
36 - RUFFA, M. J. et al. Inhibitory effect of medicinal herbs against RNA and DNA viroses. Antivir Chem Chemother, v. 15, n. 3, p.153-159, 2004. doi: 10.1177/095632020401500305
37 - RAMOS, A. et al. Screening of antimutagenicity via antioxidant activity in Cuban medicinal plants. J Ethnopharmacol, v. 87, n. 2-3, p.241-246, 2003. doi: 10.1016/s0378-8741(03)00156-9
38 - CACERES, A. et al. Plants used in Guatemala for the treatment of respiratory diseases. 1. Screening of 68 plants against gram-positive bactéria. J Ethnopharmacol, v. 31, n. 2, p.193-208, 1991. doi: 10.1016/0378-8741(91)90005-x
39 - COSTA, M. et al. Screening in mice of some medicinal plants used for analgesic purposes in the state of São Paulo. Part II. J Ethnopharmacol, v. 27, n. 1-2, p.25-33, 1989. doi: 10.1016/0378-8741(89)90074-3
40 - ZÉTOLA, M. et al. CNS activities of liquid and spray-dried extracts from Lippia alba-Verbenaceae (Brazilian false melissa). J Ethnopharmacol, v. 82, n. 2-3, p.207-215, 2002. doi: 10.1016/s0378-8741(02)00187-3

Referências bibliográficas

1 - BRASIL. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Formulário de Fitoterápicos da Farmacopeia Brasileira 1ª edição. Brasília: Anvisa, p. 36, 2011.
2 - BRASIL. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Formulário de Fitoterápicos da Farmacopeia Brasileira 1ª edição – Primeiro Suplemento. Brasília: Anvisa, p. 56, 2018.
3 - BRASIL. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Formulário de Fitoterápicos da Farmacopeia Brasileira 2ª edição. Brasília: Anvisa, p. 117, 2021.

Farmácia da Natureza
[ 1 ]

Fórmula

Tintura

Alcoolatura

Componente

Quantidade

Componente

Quantidade*

Etanol/água 70%

1000 mL

Etanol/água 80%

1000 mL

Folha e sumidade florida seca

100 g

Folha e sumidade florida fresca

200 g

                                                                 * Após a filtragem ajustar o teor alcoólico da alcoolatura para 70%, com adição de etanol 98%, se necessário. 
Modo de preparo
Tintura: pesar 100 g de folha e sumidade florida seca, rasurada e colocar em frasco de vidro âmbar; em seguida adicionar 1000 mL de etanol a 70%, tampar bem o frasco e deixar a planta em maceração por 7 dias, agitando o frasco diariamente. Após esse período, filtrar em papel de filtro e envasar em frasco de vidro âmbar.
 
Alcoolatura: pesar 200 g de folha e sumidade florida fresca, lavar, picar e colocar em frasco de vidro âmbar; em seguida adicionar 1000 mL de etanol a 80%, tampar bem o frasco e deixar a planta em maceração por 7 dias, agitando o frasco diariamente. Após esse período, filtrar em papel de filtro e envasar em frasco de vidro âmbar.
Principais indicações

Transtornos depressivos e migrânea (CONDE et al., 2011; CARMONA et al., 2013).

Posologia

Uso oral: tomar de 1 a 3 gotas por quilo de peso divididas em 3 vezes ao dia, sempre diluídas em água (cerca de 50 mL ou meio copo).

Farmácia da Natureza
[ 2 ]

Fórmula

Tintura

Alcoolatura

Componente

Quantidade

Componente

Quantidade*

Etanol/água 70%

1000 mL

Etanol/água 80%

1000 mL

Folha e sumidade florida seca

100 g

Folha e sumidade florida fresca

200 g

                                                                 * Após a filtragem ajustar o teor alcoólico da alcoolatura para 70%, com adição de etanol 98%, se necessário. 
Modo de preparo

Tintura: pesar 100 g de folha e sumidade florida seca, rasurada e colocar em frasco de vidro âmbar; em seguida adicionar 1000 mL de etanol a 70%, tampar bem o frasco e deixar a planta em maceração por 7 dias, agitando o frasco diariamente. Após esse período, filtrar em papel de filtro e envasar em frasco de vidro âmbar.

Alcoolatura: pesar 200 g de folha e sumidade florida lavar, picar e colocar em frasco de vidro âmbar; em seguida adicionar 1000 mL de etanol a 80%, tampar bem o frasco e deixar a planta em maceração por 7 dias, agitando o frasco diariamente. Após esse período, filtrar em papel de filtro e envasar em frasco de vidro âmbar.

Principais indicações

Hipertensão arterial leve.

Posologia

Uso oral: tomar de 1 a 3 gotas por quilo de peso, divididas em 3 vezes ao dia, sempre diluídas em água (cerca de 50 mL ou meio copo).

Farmácia da Natureza
[ 3 ]

Fórmula

Componente

Número da cápsula e quantidade

Lippia alba  (droga vegetal)

N° 0 (180 a 200 mg)

Q.s.p

1 cápsula

 
Modo de preparo

Pulverizar a droga vegetal (folhas) e encapsular.

Principais indicações

Transtornos depressivos e migrânea (CONDE et al., 2011; CARMONA et al., 2013).

Posologia

Uso oral: tomar 1 cápsula, 1 a 2 vezes ao dia.

Farmácia da Natureza
[ 4 ]

Fórmula

Componente

Número da cápsula e quantidade

Lippia alba  (droga vegetal)

N° 0 (210 a 220 mg)

Q.s.p

1 cápsula

 
Modo de preparo

Pulverizar a droga vegetal (folhas) e encapsular.

Principais indicações

Hipertensão arterial leve.

Posologia

Uso oral: tomar 1 cápsula, 1 a 2 vezes ao dia.

Farmácia da Natureza
[ 5 ]

Fórmula

Componente

Quantidade

Folha (com ou sem sumidade florida) secas rasuradas

0,4 a 0,6 g ou uma colher de sopa caseira rasa

Água q.s.p.

150 mL

 
Modo de preparo

Preparar por infusão, por 5 minutos.

Principais indicações

Migrânea (CONDE et al., 2011; CARMONA et al., 2013).

Posologia
Uso oral: adultos devem tomar 150 mL (1 xícara de chá) do infuso duas a três vezes ao dia.
 
Uso oral: crianças acima de 3 anos devem tomar 3 mL (1 colher de chá caseira) do infuso por quilograma de peso corporal por dose, duas a três vezes ao dia.

Farmácia da Natureza
[ 6 ]

Fórmula

Componente

Quantidade

Folha (com ou sem sumidade florida) secas rasuradas

0,4 a 0,6 g ou uma colher de sopa caseira

Água q.s.p.

150 mL

 
Modo de preparo

Preparar por infusão, por 5 minutos.

Principais indicações

Hipertensão arterial leve.

Posologia

Uso oral: adultos devem tomar 150 mL (1 xícara de chá) do infuso três a quatro vezes ao dia.

Referências bibliográficas

1 - PEREIRA, A. M. S. et al. Formulário Fitoterápico da Farmácia da Natureza. 3 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 159-161.
2 - PEREIRA, A. M. S. et al. Formulário Fitoterápico da Farmácia da Natureza. 3 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 161-163.
3 - PEREIRA, A. M. S. et al. Formulário Fitoterápico da Farmácia da Natureza. 3 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 391-392.
4 - PEREIRA, A. M. S. et al. Formulário Fitoterápico da Farmácia da Natureza. 3 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 392-394.
5 - PEREIRA, A. M. S. (Org.). Formulário de Preparação Extemporânea: Farmácia da Natureza. 2 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 98-100.
6 - PEREIRA, A. M. S. (Org.). Formulário de Preparação Extemporânea: Farmácia da Natureza. 2 ed. São Paulo: Bertolucci, 2020, p. 100-101.

Dados Químicos
[ 1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24 , 25 , 26 , 27 , 28 , 29 , 30 , 31 , 32 , 33 , 34 , 35 , 36 , 37 , 38 , 39 , 40 , 41 , 42 , 43 ]
Marcador:
Principais substâncias:

Ácidos fenólicos

ácido clorogênico.

Alcaloides

Fenilpropanoides

acteosídeo, isonuomiosídeo, decafeoilverbacosídeo, verbacosídeo, 2-acetil verbacosídeo, isoacteosídeo, isoverbacosídeo, calceolariosídeo E, forsitosídeo B e cistanosídeo F.

Flavonoides

apinegnina, luteolina, naringina, rutina, apigenina-7-O-diglucuronídeo, crisoeriol-7-O-diglucuronídeo, tricina-7-O-diglucuronídeo, luteolina-7-O-glucuronídeo, clerodendrina, 3-acetilclerodendrina, 5,5''-dihidroxi-6,4',6'',3''',4'''-pentamethoxi-[C(7)--O--C(7'')]-biflavona e 4',4,5,5''-tetrahidroxi-6,6'',3'''-trimethoxi-[C(7)--O--C(7'')]-biflavona.

Iridoides

tevesídeo, 8-epi-loganina, éster metílico de shanzhizida, ácido geniposídico, carioptosídeo e mussaenosídeo.

Minerais

Ca, Mg, P, Ba, Zn, Cu, Fe, Mn e Ni.

Óleos essenciais

citral (neral + geranial), limoneno, carvona, γ-terpineno, (E)-cariofileno, trans-β-cariofileno, acetato de geranil, germacreno-D, mono-(2-etilhexil) ftalato, 3,7-dimetil-2,6-octadieno, guaieno, α-humuleno, nerol, trans-verbenol, 6-metil-5-hepten-2-ona, mirceno, p-cimeno, E-4-tujanol, linalol, E-óxido limoneno, citronelol, geraniol, citronelal, acido gerânico, elemol, óxido cariofileno, guaiol, α e β-felandreno, (E)-β-ocimeno, α-terpineol, longipinanol, trans-β-cariofileno, biciclosesquifelandreno, 1,8-cineol, sabineno, piperitona, piperitenona, β-bourboneno, β-elemeno, santolina trieno, cis e trans-β-ocimeno, carvenona, β-santaleno, α e γ-muureleno, bulnesol, epóxido rosefurano, canfeno, α e β-pineno, mircenona, borneol, epi-α-muurolol, (Z)- e (E)-ocimenona, α-copaeno, trans-nerolidol, 3-octanol, alcanfor, (±)-dihidrocarvona, acetato de citronelol, metildecilcetona, lipiona, metiloctil-cetona, metil-heptenona, óxido de ceriofileno, allo-aromadendreno, cis-α-bisaboleno, isobutirato de geranilo, cubenol, butirato de geranilo, eugenol, eucaliptol, 1-octen-3-ol, biciclogermacreno, 1-metil-3-(1-metiletil), cânfora e tagetenona.

Taninos

Referências bibliográficas

1 - DE MORAIS, L. P. et al. Tocolytic activity of the Lippia alba essential oil and its major constituents, citral and limonene, on the isolated uterus of rats. Chem Biol Interact, v. 297, p.155-159, 2019. doi: 10.1016/j.cbi.2018.11.006
2 - DA SILVA, R. E. R. Vasorelaxant effect of the Lippia alba essential oil and its major constituent, citral, on the contractility of isolated rat aorta. Biomed Pharmacother, v. 108, p.792-798, 2018. doi: 10.1016/j.biopha.2018.09.073
3 - TOFIÑO-RIVERA, A. et al. Effect of Lippia alba and Cymbopogon citratus essential oils on biofilms of Streptococcus mutans and cytotoxicity in CHO cells. J Ethnopharmacol, v. 194, p.749-754, 2016. doi: 10.1016/j.jep.2016.10.044
4 - PORFÍRIO, E. M. et al. In Vitro Antibacterial and antibiofilm Activity of Lippia alba essential oil, citral, and carvone against Staphylococcus aureus. Scientific World J, p.1-7, 2017. doi: 10.1155/2017/4962707
5 - DOS SANTOS, N. O. et al. Cytotoxic and antimicrobial constituents from the essential oil of Lippia alba (Verbenaceae). Medicines (Basel), v. 3, n. 3, p.19, 2016. doi: 10.3390/medicines3030022
6 - LÓPEZ, M. A. et al. Chemical composition and antigenotoxic properties of Lippia alba essential oils. Genet Mol Biol, v. 34, n. 3, p.479-488, 2011. doi: 10.1590/S1415-47572011005000030
7 - COSTA, D. C. M. et al. Inhibitory effect of linalool-rich essential oil from Lippia alba on the peptidase and keratinase activities of dermatophytes. J Enzyme Inhib Med Chem, v. 29, n. 1, p.12-17, 2014. doi: 10.3109/14756366.2012.743537
8 - CARVALHO, P. M. M. et al. Effect of the Lippia alba (Mill.) N.E. Brown essential oil and its main constituents, citral and limonene, on the tracheal smooth muscle of rats. Biotechnol Rep (Amst), v. 17, p.31-34, 2017. doi: 10.1016/j.btre.2017.12.002
9 - CASTILLO, R. M. et al. Insecticidal and repellent activity of several plant-derived essential oils against Aedes aegypti. J Am Mosq Control Assoc, v. 33, n. 1, p.25-35, 2017. doi: 10.2987/16-6585.1
10 - CONDE, R. et al. Chemical composition and therapeutic effects of Lippia alba (Mill.) N. E. Brown leaves hydro-alcoholic extract in patients with migraine. Phytomedicine, v. 18, n. 14, p.1197-1201, 2011. doi: 10.1016/j.phymed.2011.06.016
11 - MESA-ARANGO, A. C. et al. Citral and carvone chemotypes from the essential oils of Colombian Lippia alba (Mill.) N.E. Brown: composition, cytotoxicity and antifungal activity. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 104, n. 6, p.878-884, 2009. doi: 10.1590/s0074-02762009000600010
12 - HATANO, V. Y. et al. Anxiolytic effects of repeated treatment with an essential oil from Lippia alba and (R)-(-)-carvone in the elevated T-maze. Braz J Med Biol Res, v. 45, n. 3, p.238-243, 2012. doi: 10.1590/s0100-879x2012007500021
13 - GÓMEZ, L. A. et al. Comparative study on in vitro activities of citral, limonene and essential oils from Lippia citriodora and L. alba on yellow fever vírus. Nat Prod Commun, v. 8, n. 2, p.249-252, 2013. doi: 10.1177/1934578X1300800230
14 - STASHENKO, E. E. et al. Comparison of different extraction methods for the analysis of volatile secondary metabolites of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown, grown in Colombia, and evaluation of its in vitro antioxidant activity. J Chromatogr A, v. 1025, n. 1, p.93-103, 2004. doi: 10.1016/j.chroma.2003.10.058
15 - STASHENKO, E. E. et al. Chromatographic and mass spectrometric characterization of essential oils and extracts from Lippia (Verbenaceae) aromatic plants. J Sep Sci, v. 36, n. 1, p.192-202, 2013. doi: 10.1002/jssc.201200877
16 - RICCIARDI, G. et al. Chemical variability of essential oils of Lippia alba (Miller) N. E. Brown growing in Costa Rica and Argentina. Nat Prod Commun, v. 4, n. 6, p.853-858, 2009. doi: 10.1177/1934578/x0900400623
17 - CHIES, C. E. et al. Antioxidant effect of Lippia alba (Miller) N. E. Brown. Antioxidants (Basel), v. 2, n. 4, p.194-205, 2013. doi: 10.3390/antiox2040194
18 - OLIVEIRA, D. R. et al. Ethnopharmacological study of two Lippia species from Oriximiná, Brazil. J Ethnopharmacol, v. 108, n. 1, p.103-108, 2006. doi: 10.1016/j.jep.2006.04.018
19 - GOMES, A. F. et al. Seasonal variation in the chemical composition of two chemotypes of Lippia alba. Food Chem, v. 273, p.186-193, 2019. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.11.089
20 - BLANK, A. F. et al. Chemical Diversity in Lippia alba (Mill.) N. E. Brown Germplasm. Sci World J, p.1-11, 2015. doi: 10.1155/2015/321924
21 - TIMÓTEO, P. et al. A validated HPLC method for the analysis of herbal teas from three chemotypes of Brazilian Lippia alba. Food Chem, v. 175, p.366-373, 2015. doi: 10.1016/j.foodchem.2014.11.129
22 - BARBOSA, F. G. et al. Total NMR assignments of new [C7-O-C7'']-biflavones from leaves of the limonene-carvone chemotype of Lippia alba (Mill) N. E. Brown. Magn Reson Chem, v. 43, n. 4, p.334-338, 2005. doi: 10.1002/mrc.1546
23 - HENNEBELLE, T. et al. Ethnopharmacology of Lippia alba. J Ethnopharmacol, v. 116, n. 2, p.211-222. doi: 10.1016/j.jep.2007.11.044
24 - GUPTA, M. P. (Ed.). 270 Plantas medicinales ibero-americanas. Bogotá: Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología, Cyted, Convenio Andres Bello, 1995. p. 558-559.
25 - KAMPKE, E. H. et al. Genotoxic effect of Lippia alba (Mill.) N. E. Brown essential oil on fish (Oreochromis niloticus) and mammal (Mus musculus). Environ Toxicol Pharmacol, v. 59, p.163-171, 2018. doi: 10.1016/j.etap.2018.03.016
26 - BALDISSERA, M. D. et al. Trypanocidal action of Lippia alba and Lippia origanoides essential oils against Trypanosoma evansi in vitro and in vivo used mice as experimental model. J Parasit Dis, v. 41, n. 2, p.345-351, 2017. doi: 10.1007/s12639-016-0800-7
27 - SOUSA, D. G. et al. Essential oil of Lippia alba and its main constituent citral block the excitability of rat sciatic nerves. Braz J Med Biol Res, v. 48, n. 8, p.697-702, 2015. doi: 10.1590/1414-431X20154710
28 - MONTERO-VILLEGAS, S. et al. Inhibition of mevalonate pathway and synthesis of the storage lipids in human liver-derived and non-liver cell lines by Lippia alba essential oils. Lipids, v. 52, n. 1, p.37-49, 2017. doi: 10.1007/s11745-016-4218-x
29 - TOMAZONI, E. Z. et al. In vitro antifungal activity of four chemotypes of Lippia alba (Verbenaceae) essential oils against Alternaria solani (Pleosporeaceae) isolates. An Acad Bras Cienc, v. 88, n. 2, p.999-1010, 2016. doi: 10.1590/0001-3765201620150019
30 - 30) DE SOUZA, R. C. et al. Antimicrobial and synergistic activity of essential oils of Aloysia triphylla and Lippia alba against Aeromonas spp. Microb Pathog, v. 113, p.29-33, 2017. doi: 10.1016/j.micpath.2017.10.013
31 - GLAMOCLIJA, J. et al. Chemical characterization of Lippia alba essential oil: an alternative to control green molds. Braz J Microbiol, v. 42, n. 4, p.1537-1546, 2011. doi: 10.1590/S1517-838220110004000041
32 - DE OLIVEIRA, G. T. et al. Phytochemical characterisation and bioprospection for antibacterial and antioxidant activities of Lippia alba Brown ex Britton & Wilson (Verbenaceae). Nat Prod Res, v. 32, n. 6, p.723-731, 2018. doi: 10.1080/14786419.2017.1335727
33 - JUIZ, P. J. L. et al. Essential oils and isolated compounds from Lippia alba leaves and flowers: antimicrobial activity and osteoclast apoptosis. Int J Mol Med, v. 35, n. 1, p.2111-217, 2015. doi: 10.3892/ijmm.2014.1995
34 - CASTILLO, R. M. et al. Insecticidal and repellent activity of several plant-derived essential oils against Aedes aegypti. J Am Mosq Control Assoc, v. 33, n. 1, p.25-35, 2017. doi: 10.2987/16-6585.1
35 - OLIVERO-VERBEL, J. et al. Composition, anti-quorum sensing and antimicrobial activity of essential oils from Lippia alba. Braz J Microbiol, v. 45, n. 3, p.759-767, 2014. doi: 10.1590/s1517-83822014000300001
36 - SANTOS, I. G. A. et al. Amebicidal activity of the essential oils of Lippia spp. (Verbenaceae) against Acanthamoeba polyphaga trophozoites. Parasitol Res, v. 115, n. 2, p.535-540, 2016. doi: 10.1007/s00436-015-4769-4
37 - MAYNARD, L. G. et al. Chemical composition and vasorelaxant effect induced by the essential oil of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown. (Verbenaceae) in rat mesenteric artery. Indian J Pharmacol, v. 43, n. 6, p.694-98, 2011. doi: 10.4103/0253-7613.89828
38 - ESCOBAR, P. et al. Chemical composition and antiprotozoal activities of Colombian Lippia spp. essential oils and their major componentes. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 105, n. 2, p.184-190, 2010. doi: 10.1590/s0074-02762010000200013
39 - ANDRIGHETTI-FRÖHNER, C. R. et al. Antiviral evaluation of plants from Brazilian Atlantic Tropical Forest. Fitoterapia, v. 76, n. 3-4, p.374-378, 2005. doi: 10.1016/j.fitote.2005.03.010
40 - MENESES, R. et al. Inhibitory effect of essential oils obtained from plants grown in Colombia on yellow fever virus replication in vitro. Ann Clin Microbiol Antimicrob, v. 8, p.2-6, 2009. doi: 10.1186/1476-0711-8-8
41 - FERRO, D. & PEREIRA, A. M. S. Fitoterapia: Conhecimentos tradicionais e científicos, vol. 2. 1 ed. São Paulo: Bertolucci, 2018, p. 160.
42 - VIEIRA, R. F. (Ed.). Lippia alba. In: VIEIRA, R. F. V. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o Futuro: Região Centro-Oeste. Brasília, DF: MMA, 2016. p. 385.
43 - GILBERT, B. et al. Monografia de plantas medicinais brasileiras e aclimatadas. Curitiba: Abifito, 2005, p. 64-66.

Propagação: 

por estacas, a partir de ramos não lenhosos com 10 à 12 cm de comprimento, deixando 3 a 5 pares de folhas cortadas ao meio na parte terminal da estaca. Posteriormente, inserir as estacas em sacos plásticos contendo substrato solo, areia e esterco (3:2:1), transferir para viveiro com sombrite de 50% e irrigar 1 vez/dia. O enraizamento, de modo geral, é superior à 80%. Após 60 dias as mudas devem ser transferidas para local definitivo à pleno a sol, em covas de 15x15 cm, adubadas com ½ kg de esterco, com espaçamento de 40 cm entre plantas e 40 cm entre linhas. Em períodos chuvosos estacas plantadas diretamente no solo, bem como a semeadura das sementes [ 2 , 3 , 4 , 5 , 6 , 7 ] .

Propagação.

Propagação por estaca

Propagação.

Propagação por estaca

Tratos culturais & Manejo: 

espécie não exigente quanto ao solo e clima. Em ambiente de coleção de plantas medicinais a irrigação deve ser realizada 3 vezes/semana [ 2 , 3 ] .

Colheita: 

as folhas devem ser colhidas a partir de 60 dias após o plantio no campo, em  até 2/3 da planta, entre às 15 e 17 horas. O corte dos ramos deve ser feito de 30 à 45 cm de altura do chão. A sabedoria popular recomenda que a colheita das partes aéreas das plantas deva ser realizada na lua cheia. As espécies vegetais colhidas na estação seca apresentam maior concentração de óleos essenciais, devido a maior intensidade de luz e baixo índice pluviométrico [ 2 , 3 , 5 , 7 ] .

Pós-colheita: 

a secagem das folhas deve ser realizada em temperatura ambiente ou em estufa de ar circulante à 40°C/36 horas. Após este processo a droga vegetal íntegra deve ser armazenada em ambiente não úmido e ser utilizada por período máximo de 6 meses [ 3 ] .

Problemas & Soluções: 

a espécie Lippia alba apresenta variabilidade significativa quanto a produção qualitativa e quantitativa (quimiotipos) dos metabólitos secundários, sendo influenciado por fatores externos como adubação, luminosidade, clima e estações do ano. Neste contexto, as condições de cultivo devem ser avaliadas segundo o interesse quanto ao rendimento e qualidade do óleo essencial. Esta espécie pode ser atacada por fungos Alternaria spp. e Cercospora spp [ 1 , 2 , 3 , 7 ] .

Referências bibliográficas

1 - GOMES, A. F. et al. Seasonal variation in the chemical composition of two chemotypes of Lippia alba. Food Chem, v. 273, p.186-193, 2019. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.11.089
2 - FERRO, D. & PEREIRA, A. M. S. Fitoterapia: Conhecimentos tradicionais e científicos, vol. 2. 1 ed. São Paulo: Bertolucci, 2018, p. 158-159.
3 - PEREIRA, A. M. S. et al. (Org.). Manual Prático de Multiplicação e Colheita de Plantas Medicinais. Ribeirão Preto: Bertolucci, 2011, p. 132-133.
4 - MING, L. C. Medicina verde: programa municipal de plantas medicinais e fitoterápicos de Botucatu (SP) – Agricultores. 1 ed. Prefeitura Municipal de Botucatu: Universidade Estadual Paulista, 2015, p. 19.
5 - VIEIRA, R. F. (Ed.). Lippia alba. In: VIEIRA, R. F. V. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o Futuro: Região Centro-Oeste. Brasília, DF: MMA, 2016. p. 386-389.
6 - GILBERT, B. et al. Monografia de plantas medicinais brasileiras e aclimatadas. Curitiba: Abifito, 2005, p. 62-63.
7 - SILVA, T. D. et al. Lippia alba (erva-cidreura). In: CORADIN, L. et al. (Ed.). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: Plantas para o futuro: Região Nordeste. Brasília, DF: MMA, 2018. p. 365-366.

Tipo: Nacional
Tipo de Monografia: Sistema de Farmacovigilância de Plantas Medicinais
Ano de Publicação: 2008
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