Punica granatum L.

Em ratos Wistar portadores de colite induzida por ácido trinitrobenzeno sulfônico, pré e pós-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros macroscópicos, histológicos e bioquímicos (MPO, GSH, ALP, PCR e nível de fibrinogênio).

Em camundongos ICR submetidos ao edema de orelha induzido por fenol, tratados com formulações tópicas, com posterior análise da espessura da orelha e atividade da mieloperoxidase.

Em células humanas de miofibroblastos do cólon (CCD-18Co) estimuladas por LPS, incubadas com os extratos vegetais, para determinar expressão de IGF-1R e EGFR.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de colite ulcerativa induzida por sulfato de dextrano de sódio, tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros histológicos, níveis de biomarcadores inflamatórios (PCR, TNF-α, IFN-γ, IL-1β e IL-6 e IL-10) e expressão gênica de mTOR e MAPK.

Em ratos Wistar submetidos a incisão abdominal e aderência intra-abdominal ao lado do ceco, tratados com o óleo vegetal por lavagem peritoneal, com posterior análise de parâmetros macroscópicos, concentração de proteínas e níveis de MDA, NO, GSH, IL-1β, IL-6, TNF-α, TGF-β e VEGF no fluido peritoneal.

Em camundongos Swiss e ratos Wistar tratados com o extrato vegetal e submetidos aos testes de lesão gástrica e analgesia, induzidos por indometacina/etanol e formalina, respectivamente.

Em ratos Wistar portadores de dor neuropática induzida por transecção dos nervos tibial e sural, tratados com o extrato vegetal, submetidos aos testes em pista de caminhada, alodinia ao frio e mecânica dinâmica, hiperalgesia mecânica, ao calor e ao frio, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (PT, TBARS, NO, TNF-α e glutationa) em homogenato do nervo ciático e tecidos proximais.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, e inibitória da enzima 5-lipoxigenase.

Em células de câncer de mama humano (MCF-7) incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (método de incorporação de hipoxantina^[3H]).

Em cultura de células de carcinoma de cólon humano (HT-29) incubadas com extrato vegetal, com posterior análise da proliferação celular.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de carcinogênese do cólon induzido por azoximetano (AOM), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise do número de focos de criptas aberrantes (FCA), proliferação celular (imuno-histoquímica), expressão de genes (RT-PCR) e proteínas (Western blotting) e transfecção com antagomiR de miR-126.

Em ratos Wistar portadores de obesidade induzida por dieta hiperlipídica, tratados com extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal, teste de tolerância à glicose, pressão arterial, perfil lipídico, marcadores vasculares (E-selectina, ICAM, VWF e adiponectina) e inflamatórios (leptina, insulina, TNF-α, PAI-1, IL-1α, IL-1β, IL-6 e IL-10) em homogenato do tecido adiposo.

Em camundongos C57BL/6 portadores de lesões hepáticas e neurológicas, induzidas por dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de perfil lipídico hepático e expressão de genes (hepático e hipocampo).

Em coelhos submetidos a administração do suco vegetal, com posterior análise de parâmetros hematológicos, coagulação, anticoagulação, agregação plaquetária e histopatológicos hepáticos.

Em células endoteliais do cérebro humano (HBMEC) e células de mieloma múltiplo (KMS26, MM1S e U266) incubadas com o suco vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (ensaio ATPlite 1step e MTT) e ciclo celular (citometria de fluxo); e estimuladas com VEGF-A para avaliar a invasão/migração celular e formação de tubos, e expressão gênica (mRNA e PPARγ).

Em anéis de aorta torácica de coelhos (Nova Zelândia), incorporados em Matrigel (na presença ou não de VEGF-A), incubados com o suco vegetal, com posterior análise da atividade angiogênica.

Em ratos Wistar portadores de artrite induzida por adjuvante completo de Freund (FCA), tratados com a fração vegetal, com posterior análise do escore artrítico, peso corporal, volume da pata, diâmetro articular e parâmetros hematológicos.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais NO, DPPH e O^-₂.

Em leucócitos isolados do sangue de humanos estimulados com LPS, incubados com os extratos vegetais, com posterior análise da viabilidade celular (microscopia), citotoxicidade (MTT), níveis de NO, CXC 1 e 2, IL-6, IL-8, IL-10 e TNF-α (ELISA e qRT-PCR).

Determinar o sinergismo dos extratos, através do gráfico do índice de combinação e análise da curva-dose-efeito; e a citotoxicidade (MTT) em cultura de fibroblastos do pulmão de humanos (WI-38).

Em ratos albinos (MISR) portadores de asma brônquica induzida por ovalbumina, tratados com a combinação dos extratos vegetais (aerossol por inalação), com posterior análise de parâmetros bioquímicos do fluido de lavagem broncoalveolar (nível de mucina) e do homogenato pulmonar (ERO's, TBARS, NO, GSH, GPX e GR), expressão de genes no tecido pulmonar (GPX, SOD, NF-kB, IKK, TNF-α, COX-2, iNOS, IL-13, COL1A1 e MUC5AC) e parâmetros histopatológicos pulmonar.

Em cultura de Streptococcus mutans submetidas ao teste de disco-difusão para determinar a concentração inibitória mínima (CIM).

Em culturas de Streptococcus mutans e Phrophyromonas gingivalis submetidos ao teste de microdiluição, com posterior análise das concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM).

Em culturas de Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Pseudomonas aeruginosa e Escherichia coli submetidas ao teste ao teste de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar o halo de inibição e a concentração inibitória mínima (CIM), respectivamente.

Em ratos Wistar infectados dorsalmente por S. aureus e S. epidermidis, tratados com a combinação dos extratos de P. granatum e E. uniflora, com posterior análise das unidades formadoras de colônia (UFC/placa).

Em culturas de Staphylococcus aureus, Vibrio cholerae, V. parahaemolyticus, Chromobacterium violaceum e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar zona de inibição (mm), as concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM), tempo de morte, ação bacteriolítica, vazamento da membrana citoplasmática, atividades antiquórum e antibiofilme, e inibição da motilidade bacteriana.

Em culturas de Escherichia coli e Salmonella sp. submetidas ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm).

Em cepas de Escherichia coli, Salmonella typhimurium, Shigella dysenteriae e Staphylococcus aureus submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM) e zona de inibição (mm).

Em periodontopatógenos humanos, Porphyromonas  gingivalis, Treponema  denticola, Tannerella forsythia e Aggregatibacter actinomycetemcomitans submetidos aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar zona de inibição (mm), concentração inibitória mínima (CIM), concentração bactericida mínima e o sinergismos entre os extratos vegetais.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em isolados clínicos de Mycobacteria tuberculosis incubados com o extrato vegetal, associado aos antibióticos rifampicina e isoniazida, submetidos aos testes de sensibilidade e sinergismo (Sistema BACTEC MGIT 960), com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH e redução do íon férrico (FRAP).

Em cepas de Staphylococcus aureus, Streptococcus epidermidis e Pseudomonas aeruginosa submetidas aos testes de microdiluição e disco-difusão em ágar, para determinar concentração inibitória (CIM) e a zona de inibição (mm).

Em ratos Wistar portadores de feridas de excisão (2 mm de profundidade) na região dorsal, tratados com a pomada contendo o extrato vegetal (em associação ou não), com posterior analise de parâmetros histopatológicos.

Em culturas de Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Klebsiella pneumoniae e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm).

Em células de câncer de mama humano (MCF-7) incubadas com as nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade (MTT).

Em cepas de Staphylococcus aureus, S. epidermidis e Escherichia coli incubadas com o extrato vegetal e submetidas aos testes de microdiluição em ágar, para determinar concentração inibitória mínima (CIM).

Em sangue de humano incubado com a combinação polimérica contendo o extrato vegetal, com posterior análise da ação hemolítica.

Em células de fibroblasto murino (L929) incubadas com o extrato vegetal e combinação polimérica contendo o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade celular (MTT) e proliferação celular (ensaio raspagem).

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-glicosidase e α-amilase e antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS.

Em células de câncer hepático de humano (HepG2) incubadas com extrato vegetal e nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em cepas de Sthaphylococcus aureus e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar o halo de inibição (mm).

Em camundongos NMRI portadores de convulsão induzidas por estricnina e pentilenotetrazol, pré-tratados com extrato vegetal, com posterior análise do tempo latência antes do início da convulsão, duração da convulsão, proteção contra convulsão e taxa de mortalidade.

Em ratas Wistar ovariectomizadas tratadas com extrato vegetal, submetidas aos testes de natação forçada e campo aberto, com posterior análise da ativação de receptores estrogênicos, na presença de substâncias agonistas e antagonistas.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e O₂^-, e inibitória das enzimas COX-1 e 2, XO, AChE e MAO-A; e em cultura de cultura de células Hep-2 e Artemia salina estimuladas ou não por peroxido de oxigênio, incubadas com o suco vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT).

Em ratos Wistar tratados com os extratos vegetais, submetidos aos testes de diarreia induzida por óleo de mamona e propulsão gastrointestinal com carvão ativado na presença de ioimbina e clonidina.

Em culturas de Candida albicans, C. dubliniensis, C. tropicalis e C. krusei submetidas ao teste de microdiluição em ágar, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM) e fungicida mínima (CFM), análise de sinergismo e formação de biofilme (MTT).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH, da redução do íon férrico (FRAP) e peroxidação lipídica (em homogenato hepático).

Em camundongos Swiss portadores de genotoxicidade induzida por ciclofosfamida, pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise dos danos ao DNA (teste do micronúcleo em células da medula óssea) e parâmetros bioquímicos (TBARS, CAT, SOD, GST, GSH e proteínas).

Em camundongos Swiss portadores malária induzida por infecção com Plasmodium chabaudi (em hemácias), tratados com extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histológicos (microscopia), apoptose (TUNEL), bioquímicos (CAT, MDA, NO) e expressão de IL-1β, TNF-α e IFN-γ (qPCR) no baço.

Em cepas de Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Streptococcus mutans, Candida albicans, C. tropicalis e C. glabra submetidas ao teste de microdiluição, para determinar concentração inibitória mínima (CIM) e concentração microbicida mínima (MMC).

Em culturas de Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Enterococcus faecalis, Escherichia coli, Klebsiella pneumonia, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris e Candida albicans submetidas ao teste de disco-difusão, com posterior análise do halo de inibição.

Em cultura de patógenos orais, Streptococcus mutans e Candida albicans, submetidas ao teste microdiluição em ágar, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM), bactericida mínima (CBM) e fungicida mínima (CFM), ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm) e ao teste de formação de biofilme em microplaca com análise em Microscopia Eletrônica de Varredura.

Determinar a atividade antioxidante (radical DPPH, capacidade antioxidante total, peroxidação lipídica e poder redutor) e inibitória da enzima α-glicosidase.

Em cepas de Escherichia coli, Klebsiella pneumonia, Streptomyces diastaticus, Enterococcus faecalis, Enterobacter aerogenes, Staphylococcus epidermidis, Mycobacterium smegmatis, Curvularia lunata, Trichophyton rubrum, T. mentagrophytes, Botrytis cinerea, Aspergilus flavus e A. niger submetidas aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, com posterior análise de zona de inibição (mm) e concentração inibitória mínima (CIM).

Em cultura de Caenorhabditis elegans incubada com os extratos vegetais, com posterior análise de acúmulo de triglicerídeos, quantificação de lipídeos e tempo de sobrevivência.

Em camundongos albinos e ratos Sprague-Dawley tratados com o extrato vegetal, submetidos aos testes de contorções abdominais, hiperalgesia na pata traseira e movimento da calda, induzidos por ácido acético, carragenina e imersão em água quente, respectivamente.

Em ratos Wistar portadores de obesidade induzida por dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal, ingestão de alimentos, parâmetros bioquímicos (TAG, TC, glicose, insulina e leptina) e histológicos, e expressão de genes nos tecidos hepático, estomacal e adiposo branco.

Em ratas albinas ovariectomizadas bilateral para indução da síndrome pós-menopausa, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (E2, BGP, PT, ALP, TRAcP, CT, TG, AST, ALT, cálcio, sódio, potássio, creatinina, ureia e ácido úrico) e histológico (crista ilíaca e tíbia direita).

Determinar a capacidade antioxidante total e a atividade das enzimas SOD, CAT e GPx.

Em cultura de células HepG2 portadoras estresse oxidativo induzido por hidroperóxido de terc-butila (t-BOOH), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da atividade metabólica (ensaio MTT), integridade da membrana plasmática (ensaio LDH), peroxidação lipídica (TBARS) e expressão de ACTB, GAPDH, HMBS, SDHA, CAT, GPx-1 e 4, SOD-1 e 2 (RT-PCR).

Determinar a capacidade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH, O₂^- e NO, peroxidação lipídica em homogenato hepático e redução de Fe³⁺.

Em ratos Wistar portadores de lesões hepáticas induzidas por tetracloreto de carbono, pré-tratados com o suco vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (GSH, CAT, SOD, GST, GPx, ácido úrico, ureia, creatinina, nitrito/nitrato) e histopatológicos, e peroxidação lipídica em homogenato renal.

Em ratos Wistar portadores de estresse oxidativo induzido por cloreto de mercúrio (HgCl₂), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (PMRS, FRAP, MDA, AOPP e GSH).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, capacidade quelante de íons Fe²⁺ e branqueamento com β-caroteno.

Em cultura de células humanas de melanoma amelanótico (C32), adenocarcinoma de células renais (ACHN), carcinoma de próstata hormônio dependente (LNCaP), carcinoma de células grandes do pulmão caucasiano (COR-L23), câncer de mama (MCF-7), melanoma maligno (A375) e adenocarcinoma cervical (HeLa) incubadas com extrato vegetal, com posterior análise de atividade antiproliferativa (ensaio SRB).

Determinar a atividade antioxidante através dos testes: capacidade antioxidante total, eliminação do radical DPPH, redução do íon ferricianeto, peroxidação lipídica, redução de íon cúprico e quelação de íons Fe⁺².

Em cultura de eritrócitos incubados com peróxido de hidrogênio para indução de estresse oxidativo, incubados com os extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise da ação antioxidante.

Em culturas de células de câncer humano (MG-63, A-549, HeLa, HepG2 e IMR-32) e células normais (T293), incubadas com os extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise de viabilidade celular (resazurina), morfologia celular e nuclear (microscopia confocal), níveis de espécies reativas de oxigênio e potencial mitocondrial (ELISA).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em cultura de células de câncer humano do cólon (HT29 e HCT116), fígado (HepG2 e Huh7), mama (MCF-7 e MDA-MB-231) e próstata (DU145) incubadas com a fração hidrofílica, com posterior análise da proliferação celular (Sulforodamina B), apoptose (anexina V FITC), ciclo celular (iodeto de propídio), níveis de citocinas, quimiocinas e fator de crescimento (ELISA).

Em ratos Wistar portadores de estresse oxidativo induzido por tetracloreto de carbono, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (AST, ALT, ALB, BT e TBARS) e histológicos (fígado, rim e cérebro).

Determinar a atividade antioxidante, inibitória da peroxidação lipídica e da produção de produtos finais de glicação avançada (AGEs), através da eliminação do radical ABTS, método do tiocianato férrico e ensaio com BSA/ribose, respectivamente.

Em neutrófilos polimorfonucleares isolados de ratos Wistar, estimulados com LPS e incubados com o extrato vegetal, com posterior análise de migração leucocitária (câmara de Boyden).

Em cepas de Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Pseudomonas aeruginosa e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar concentração inibitória (CIM) e a zona de inibição (mm).

Em ratos Wistar portadores de infecção cutânea (dorso) por Staphylococcus aureus e S. epidermidis, tratados topicamente com as formulações contendo os extratos vegetais, com posterior análise do número de unidades formadoras de colônias (UFC) e a identificação bacteriana.

Em cultura de células humanas de adenocarcinoma de pulmão (H1299) e de carcinoma de colorretal (HCT116) incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise da viabilidade celular (cristal violeta), citotoxicidade (MTS) e morte celular (caspase 3).

Em cultura de células de câncer de próstata humano (DU145 e PC3) e de camundongos (TRAMP-C1) incubadas com extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade celular (MTT), formação de colônias, morfologia de núcleos, apoptose, potencial de membrana, espécies reativas ao oxigênio, migração e invasão celular, e expressão de proteínas.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS.

Em camundongos transgênicos portadores de oncogenes do papilomavírus humanos (HPV), tratados com os extratos vegetais, com posterior análise do peso corporal, consumo de alimentos, parâmetros bioquímicos (creatinina, ureia, ALT e AST), histológicos e estresse oxidativo em homogenato hepático e renal.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em cultura de células de humanos de câncer de mama (MCF-7), de ovário (SKOV3), da próstata (PC-3) e de pulmão (A549) incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em ratas Sprague-Dawley portadores de câncer de mama induzido por DMBA, tratadas com o fitoterápico, com posterior análise da expressão de COX-2, HSP90, IκBα, NF-κB-p65 e Nrf2 (imuno-histoquímica).

Em cultura de células de adenocarcinoma da mama de humanos (MCF-7), incubadas com as nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade celular (ensaio MTT), parâmetros microscópicos (microscopia invertida), densidade nuclear e apoptose (iodeto de propídio), ciclo celular (citometria de fluxo) e degradação do DNA (ensaio Cometa).

Em culturas de células de mieloma múltiplo humano (U266) incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise da proliferação celular (MTT), potencial de membrana mitocondrial (ELISA), apoptótica (Anexina-V-FITC/PI) e ciclo celular (citometria de fluxo).

Em cultura de células humanas de rim embrionário (HEK293), de fígado normal (L02) e de câncer de pulmão (A549 e H1299), em células Vero (rim de macaco africano) e de câncer de pulmão Lewis de camundongos (LL/2), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT) e formação de colônias.

Em cultura de células humanas de câncer de pulmão (A549 e H1299) e de câncer de pulmão Lewis de camundongos (LL/2), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise do teste migração e invasão celular (cicatrização de feridas e câmara de Boyden), ciclo celular, apoptose, potencial de membrana mitocondrial, níveis de espécies reativas de oxigênio e expressão de MMP 2 e 9 (Western blotting).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, inibitória de 5-lipoxigenase (5-LOX), acetilcolinesterase (AChE) e butirilcolinesterase (BuChE).

Em células de câncer de mama (MCF-7) incubadas com o extrato e frações vegetais, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em células renais de macacos (Vero E6), caninas (MDCK) e células epiteliais de adenocarcinoma alveolar basal de humanos (A549) infectadas por vírus MVA (teste, envelopado), IAV (influenza A), SARS-COV-2 (coronavírus 2) e ADY5 (adenovírus tipo 5), incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise antiviral.

Em células de carcinoma epidérmico laríngeo humano (Hep-2) incubadas com extrato e frações vegetais, com posterior análise de viabilidade celular (MTT).

Em células de carcinoma epidérmico laríngeo humano (Hep-2) infectadas por adenovírus, tratadas com o extrato e frações vegetais, com posterior análise da concentração inibitória media (CI₅₀) e atividade inibitória da adsorção e pós-adsorção viral.

Em cultura de células Vero incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (corante vermelho neutro).

Em cultura de células Vero infectadas com o vírus MAYV (febre Mayaro) e incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da ação virucida, microscopia viral e imunofluorescência celular.

Em coelhas prenhes tratadas com extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise de parâmetros bioquímicos (hormônio luteinizante, testosterona e hormônio folículo estimulante).

Em coração isolados de ratos Wistar submetidos a isquemia global e reperfusão (Langendorff), associado ou não com L-NAME (inibe a síntese de NO) com posterior análise de parâmetros hemodinâmicos (FC, CPP, LVDP, RPP e taxa de aumento da pressão ventricular esquerda), parâmetros bioquímicos (Ck-MB, LDH, Tnl, SOD, GPx, CAT e proteínas totais) e tamanho de infarto.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de diabetes induzido por estreptozotocina e lesões cutâneas por excisão, tratados topicamente com o fitoterápico, com posterior análise de parâmetros morfológicos (índice de fechamento da ferida) e histopatológicos.

Em culturas de Streptococcus pneumonia, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumonia, Escherichia coli, Clostridium perfringens e Bacteroides incubadas com o extrato e fração vegetal contendo ou não o hidrogel, com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM).

Em ratos portadores de feridas dorsais por excisão, tratados com o extrato e fração de acetato de etila, incorporados ou não ao hidrogel, com posterior análise de parâmetros histológicos e imuno-histoquímicos (TGF-β1 e NF-kB).

Em cultura de células PC12 incubadas com o óleo vegetal e metadona, com posterior análise da viabilidade célula (Azul de tripano), citotoxicidade (LDH), proliferação e morte celular (MTT e TUNEL), níveis de óxido nítrico (Griess), de citocinas (IL-1β, IL-6, INF-γ e TNF-α), potencial de membrana mitocondrial (rodamina-123) e atividade da caspase (ensaio colorimétrico).

Em preparações jejunais isoladas de coelhos incubadas com o extrato vegetal, cloreto de potássio, cloreto de bário, atropina (antagonista colinérgico) e loratadina (antagonista da histamina), com posterior análise da contratilidade muscular.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de lesões hepáticas induzidas por dietilnitrosamina e fenobarbital, tratados com o extrato vegetal (pré, simultâneo e pós-tratamento), com posterior análise de parâmetros bioquímicos (caspase 3, fragmentação do DNA, MDA, GSH, t-GPx, GSR, GST, SOD, AST e ALT) e histopatológicos hepáticos.

Em camundongos C57BL/6 portadores de hepatite autoimune induzida por concanavalina A, pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (AST e ALT) e histopatológicos, níveis de TNF-α, IFN-γ e IL-6 (ELISA) e de CD4, CD8 e CD69 (citometria de fluxo).

Em camundongos Swiss portadores de lesões hepáticas induzidas por Plasmodium chabaudi, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histopatológicos, hematológicos (eritrócitos, leucócitos e hemoglobina) e bioquímicos hepáticos (GSH, NO, CAT, ALT, AST, ALP e bilirrubina) e apoptose.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de lesões hepáticas e renais induzidas por vancomicina, tratados (pré ou simultâneo) com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histopatológicos, bioquímicos (creatinina, ácido úrico, ureia, proteínas, globulina, AST, ALP, SOD, CAT, GSH e MDA) e imuno-histoquímicos (BcL-2 e caspase).

Em ratos Wistar portadores de lesões hepatorrenal induzidas por nanopartículas de óxido de cobre (CuO-NPs), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (ALT, AST, BUN, CRE, MDA e GSH), histopatológicos renais e hepáticos e imuno-histoquímicos (caspase-3 e NF-kB), expressão de caspase-3 e Bcl-2 e acúmulo de CuO-NPs nos tecidos.

Em ratos albinos portadores de diabetes induzido por estreptozotocina e nicotinamida, tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos sérico, renal e hepático (HbA1c, CT, HDL, LDL, TG, AST, ALT, ALP, GSH, MDA, NO, CAT e proteínas) e histopatológicos do pâncreas.

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-amilase, lipase e α-glucosidase, e antioxidante através da capacidade redutora (FeCl₃).

Determinar a atividade antioxidante através da redução do fosfomolibdênio e inibitória das enzimas α-amilase, tirosinase e hialuronidase.

Em células tronco mesenquimais incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT) e expressão de miRNAs (cDNA e bioinformática).

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-amilase pancreática (suína) e α-glicosidase intestinal (rato).

Determinar a atividade antioxidante através do poder redutor (FeCl₃) e capacidade de quelação de metais (FeSO₄).

Em ratos Wistar portadores de nefrotoxicidade induzida por cloreto de bário, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de níveis de parâmetros bioquímicos plasmático e renal (ureia, ácido úrico, creatinina, proteínas e metalotioneína, MDA, AOPP, H₂O₂, NPSH, GSH, LDH, CAT, GPx e SOD), expressão de MT-1 e MT-2 (RT-PCR) e parâmetros histopatológicos.

Em ratos transgênicos para a doença e Alzheimer, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise dos testes de labirinto aquático de Morris e labirinto em Y, expressão de APP e Aβ (Western blotting), níveis de peptídeos A42 e A40, e enzimas BACE1 e γ-secretase (ELISA).

Em camundongos C57Bl/6 portadores de lesões neurológicas induzidas por peptídeo β-amiloide, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise da atividade locomotora e da memória espacial, parâmetros bioquímicos (proteínas totais, BDNF, AChE, TBARS, SOD, TNF-γ, OGT e GPT) e histológicos (quantificação de placas senis).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, branqueamento com β-caroteno.

Em células neuronais de feocromocitoma (PC12) portadores de toxicidade induzida por ácido 3-nitropropiônico (3-NP), incubadas com óleo essencial, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), níveis de lactato desidrogenase (LDH), piruvato e lactato, óxido nítrico, peroxidação lipídica (MDA) e espécies reativas ao oxigênio (ERO's).

Em ratos Wistar submetidos à radiação localizada no sistema reprodutor masculino, tratados com o suco vegetal, com posterior análise do peso corporal e dos órgãos (testículos, próstata e epidídimo), parâmetros histopatológicos, bioquímicos (SOD, GSH, MDA e CAT), do esperma (contagem de espermatozoides, morfologia e viabilidade) e níveis de espécies reativas ao oxigênio.

Em ratas Wistar portadoras de aderências peritoneais induzidas por processo cirúrgico, pré-tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros macroscópicos e microscópicos.

Em ratas Wistar submetidas à ovariectomia bilateral, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (FSH, HDL, LDL, TG, CT e estradiol) e histológicos (espessura do córtex tibial e do epitélio vaginal).

Determinar a atividade inibitória da enzima tirosinase isoladas de melanomas B16.